Серая славка Curruca communis (Latham, 1787) - многочисленная воробьинообразная птица Пале арк тики семейства Sylviidae. Исследования митохондриальных геномов в этой группе, претерпевшей из менения в систематике, ограничены, особенно в недавно восстановленном роде Curruca. Нами описан и охарактеризован полный митогеном C. communis, и определено филогенетическое положение вида. Митогеном был секвенирован с помощью митохондриального обогащения и собран de novo. Длина ми тогенома составляет 17141 п. о., с составом оснований 32.1% C, 30.4% A, 23.6% T и 13.9% G. В его состав входят 13 белоккодирующих генов, два гена рибосомной РНК, 22 гена транспортной РНК и два кон трольных региона неодинаковой длины. Анализ использования кодонов в белоккодирующих генах показал, что среди аминокислот наиболее высокая частота использования характерна для лейцина, далее следуют треонин и аргинин, а наименьшее значение отмечено для цистеина. Филогенетическое дерево, построенное методом максимального правдоподобия, показало с высочайшим уровнем под держки, что C. communis занимает сестринское положение по отношению к кладе, включающей два других вида рода Curruca. Анализ селективного давления демонстрирует сильный очищающий отбор для всех трех видов этого рода с известными митогеномами. Паттерны участков контрольного регио на идентичны для митогеномов Curruca, но не для большинства известных митогеномов второго рода семейства, Sylvia. У видов Curruca имеется один длинный и второй укороченный контрольный регион, что нетипично для надсемейства Sylvioidea в целом, где чаще встречаются два почти равных по дли не контрольных региона. В данном исследовании впервые представлен опубликованный митогеном C. communis, который может быть использован для изучения эволюции и популяционной генетики это го вида, а также для дальнейших исследований филогении и таксономии славковых.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
- УДК
- 575.86. Происхождение отдельных групп организмов (таксонов). Филогенез
577.212. Центральная догма молекулярной биологии. Кодирование наследственной информации. Генетический код и его химическая природа
598.288. Cinclidae. Оляпковые. Troglodytidae. Крапивниковые. Mimidae. Пересмешниковые. Prunellidae. Завирушковые. Turdidae. Дроздовые. Silviidae. Славковые. Muscicapidae. Мухоловковые. Timaliidae. Тимелиевые. Кустарницы
The Common or Greater Whitethroat Curruca communis (Latham, 1787) is a small passerine bird, one of the most abundant in the family Sylviidae. This mostly insectivorous species inhabits open landscapes including shrublands and agricultural areas, is widely distributed across the Western Palearctic east to Mongolia, winters in Sub-Saharan Africa, and includes four currently recognized subspecies (Aymí and Gargallo 2021). The genus Curruca Bechstein, 1802 was long considered invalid and was not separated from Sylvia until the latest edition of the Howard and Moore Checklist of the Birds (Dickinson and Christidis 2014), following studies based on mitochondrial markers that revealed substantial divergence among clades within the genus Sylvia (Voelker and Light 2011). Many genera formerly included within the family Sylviidae are now placed in different families based on molecular and, partly, morphological evidence (Cai et al. 2019; Billerman 2023). Sylviidae now includes only the two genera mentioned above.
Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.
Список литературы
1. Abdilzadeh R., Aliabadian M. and Olsson U. 2019. A molecular assessment of the taxonomy of Iranian Sylvia warblers (Aves; Sylviidae). Journal of Genetic Resources, 5(2): 149-162. DOI: 10.22080/jgr.2019.2434
2. Abdilzadeh R., Aliabadian M. and Olsson U. 2020. Molecular assessment of the distribution and taxonomy of the Lesser Whitethroat Sylvia curruca complex in Iran, with particular emphasis on the identity of the contentious taxon, zagrossiensis Sarudny, 1911. Journal of Ornithology, 161(3): 665-676. DOI: 10.1007/s10336-020-01772-x EDN: BWAKVX
3. Al Arab M., Höner zu Siederdissen C., Tout K., Sahyoun A.H., Stadler P.F. and Bernt M. 2017. Accurate annotation of protein-coding genes in mitochondrial genomes. Molecular Phylogenetics and Evolution, 106: 209-216. DOI: 10.1016/j.ympev.2016.09.024
4. Arcones A., Ponti R. and Vieites D.R. 2021. Mitochondrial substitution rates estimation for divergence time analyses in modern birds based on full mitochondrial genomes. Ibis, 163(4): 1463-1471. DOI: 10.1111/ibi.12965 EDN: MUQWTU
5. Aymí R. and Gargallo G. 2021. Greater Whitethroat (Curruca communis), version 1.1. In: J. del Hoyo, A. Elliott, J. Sargatal, D. Christie and E. de Juana (Eds). Birds of the World. Cornell Lab of Ornithology. DOI: 10.2173/bow.grewhi1.01.1
6. Bankevich A., Nurk S., Antipov D., Gurevich A.A., Dvorkin M., Kulikov A.S., Lesin V.M., Nikolenko S.I., Pham S., Prjibelski A.D., Pyshkin A.V., Sirotkin A.V., Vyahhi N., Tesler G., Alekseyev M.A. and Pevzner P.A. 2012. SPAdes: A new genome assembly algorithm and its applications to single-cell sequencing. Journal of Computational Biology, 19(5): 455-477. DOI: 10.1089/cmb.2012.0021 EDN: PDOPXT
7. Benson G. 1999. Tandem repeats finder: a program to analyze DNA sequences. Nucleic Acids Research, 27(2): 573-580. DOI: 10.1093/nar/27.2.573 EDN: IUXIWX
8. Billerman S.M. 2023. Sylviid warblers and allies (Sylviidae), version 2.0. In: S.M. Billerman, B.K. Keeney and N.D. Sly (Eds). Birds of the World. Cornell Lab of Ornithology. DOI: 10.2173/bow.sylvii1.02
9. Brambilla M., Vitulano S., Spina F., Baccetti N., Gargallo G., Fabbri E., Guidali F. and Randi E. 2008. A molecular phylogeny of the Sylvia cantillans complex: Cryptic species within the Mediterranean basin. Molecular Phylogenetics and Evolution, 48(2): 461-472. DOI: 10.1016/j.ympev.2008.05.013 EDN: MGTEPX
10. Cai T., Cibois A., Alström P., Moyle R.G., Kennedy J.D., Shao S., Zhang R., Irestedt M., Ericson P.G.P., Gelang M., Qu Y., Lei F. and Fjeldså J. 2019. Near-complete phylogeny and taxonomic revision of the world’s babblers (Aves: Passeriformes). Molecular Phylogenetics and Evolution, 130: 346-356. DOI: 10.1016/j.ympev.2018.10.010 EDN: TQAVLB
11. Chen P., Sun C., Liu B., Lu C. and Chen Y. 2020. Complete mitochondrial genome of the reed parrotbill Paradoxornis heudei (Aves: Passeriformes: Muscicapidae). Mitochondrial DNA Part B, 5(2): 1467-1468. DOI: 10.1080/23802359.2020.1742213 EDN: AITTEM
12. Chen Yuxin, Chen Yongsheng, Shi C., Huang Z., Zhang Y., Li S., Li Y., Ye J., Yu C., Li Z., Zhang X., Wang J., Yang H., Fang L. and Chen Q. 2018. SOAPnuke: a MapReduce acceleration-supported software for integrated quality control and preprocessing of high-throughput sequencing data. GigaScience, 7(1): gix120. DOI: 10.1093/gigascience/gix120
13. Cucini C., Leo C., Iannotti N., Boschi S., Brunetti C., Pons J., Fanciulli P.P., Frati F., Carapelli A. and Nardi F. 2021. EZmito: a simple and fast tool for multiple mitogenome analyses. Mitochondrial DNA Part B, 6(3): 1101-1109. DOI: 10.1080/23802359.2021.1899865 EDN: ASWXJD
14. Dickinson E.C. and Christidis L. (Eds). 2014. The Howard and Moore complete checklist of the birds of the world. Vol. 2. Passerines. 4th ed. Aves Press, Eastbourne, 804 p.
15. Dietzen C., Garcia-del-Rey E., Castro G.D. and Wink M. 2008. Phylogenetic differentiation of Sylvia species (Aves: Passeriformes) of the Atlantic islands (Macaronesia) based on mitochondrial DNA sequence data and morphometrics. Biological Journal of the Linnean Society, 95(1): 157-174. DOI: 10.1111/j.1095-8312.2008.01005.x
16. Donath A., Jühling F., Al-Arab M., Bernhart S.H., Reinhardt F., Stadler P.F., Middendorf M. and Bernt M. 2019. Improved annotation of protein-coding genes boundaries in metazoan mitochondrial genomes. Nucleic Acids Research, 47(20): 10543-10552. DOI: 10.1093/nar/gkz833
17. Eberhard J.R. and Wright T.F. 2016. Rearrangement and evolution of mitochondrial genomes in parrots. Molecular Phylogenetics and Evolution, 94(A): 34-46. DOI: 10.1016/j.ympev.2015.08.011
18. Edgar R.C. 2004. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Research, 32(5): 1792-1797. DOI: 10.1093/nar/gkh340 EDN: IUSJFT
19. Feng S., Stiller J., Deng Y., Armstrong J., Fang Q., Reeve A.H. et al. 2020. Dense sampling of bird diversity increases power of comparative genomics. Nature, 587: 252-257. DOI: 10.1038/s41586-020-2873-9 EDN: QWXQDP
20. Greiner S., Lehwark P. and Bock R. 2019. OrganellarGenomeDRAW (OGDRAW) version 1.3.1: expanded toolkit for the graphical visualization of organellar genomes. Nucleic Acids Research, 47(W1): W59-W64. DOI: 10.1093/nar/gkz238
21. Guindon S., Dufayard J.-F., Lefort V., Anisimova M., Hordijk W. and Gascuel O. 2010. New algorithms and methods to estimate maximum-likelihood phylogenies: Assessing the performance of PhyML 3.0. Systematic Biology, 59(3): 307-321. DOI: 10.1093/sysbio/syq010 EDN: NZHYAP
22. He W., Xu H., Li D., Xie M., Zhang M., Ni Q., Wu J., Wen A., Wang Q., Zhu G. and Yao Y. 2019. Complete mitochondrial genome and phylogenetic analysis of Black-chinned Yuhina (Yuhina nigrimenta). Mitochondrial DNA Part B, 4(1): 605-606. DOI: 10.1080/23802359.2018.1561226 EDN: WXXLWB
23. Hoang D.T., Chernomor O., von Haeseler A., Minh B.Q. and Vinh L.S. 2018. UFBoot2: Improving the Ultrafast bootstrap approximation. Molecular Biology and Evolution, 35(2): 518-522. DOI: 10.1093/molbev/msx281 EDN: VHUCPN
24. Kalyaanamoorthy S., Minh B.Q., Wong T.K.F., von Haeseler A. and Jermiin L.S. 2017. ModelFinder: fast model selection for accurate phylogenetic estimates. Nature Methods, 14(6): 587-589. DOI: 10.1038/nmeth.4285 EDN: AOALRC
25. Lee B.D. 2018. Python implementation of codon adaptation index. Journal of Open Source Software, 3(30): 905. DOI: 10.21105/joss.00905
26. Li Y., Yao J., Zhao X., Li L. and Yan S. 2016. Complete mitochondrial genome sequence of Chestnut-flanked white-eye (Zosterops erythropleurus). Mitochondrial DNA Part A, 27(5): 3529-3530. DOI: 10.3109/19401736.2015.1074203
27. Manthey J.D., Bourgeois Y., Meheretu Y. and Boissinot S. 2022. Varied diversification patterns and distinct demographic trajectories in Ethiopian montane forest bird (Aves: Passeriformes) populations separated by the Great Rift Valley. Molecular Ecology, 31(9): 2664-2678. DOI: 10.1111/mec.16417 EDN: INKUXL
28. Maricic T., Whitten M. and Pääbo S. 2010. Multiplexed DNA sequence capture of mitochondrial genomes using PCR products. PLoS ONE, 5(11): e14004. DOI: 10.1371/journal.pone.0014004 EDN: OMJCQB
29. Martin M. 2011. Cutadapt removes adapter sequences from high-throughput sequencing reads. EMBnet.journal, 17(1): 10-12. DOI: 10.14806/ej.17.1.200
30. Nespoli D., Pellegrino I., Galaverni M., Caniglia R., Sunyer J., Mengoni C., Randi E., Galimberti A., Rubolini D., Spina F., Gargallo G. and Brambilla M. 2021. Disentangling the taxonomic status and phylogeographic structure of Marmora’s (Curruca sarda) and Balearic Warbler (Curruca balearica): a genetic multi-marker approach. Journal of Ornithology, 162(3): 909-918. DOI: 10.1007/s10336-021-01885-x EDN: QPKOZB
31. Nguyen L.-T., Schmidt H.A., von Haeseler A. and Minh B.Q. 2015. IQ-TREE: A fast and effective stochastic algorithm for estimating maximum-likelihood phylogenies. Molecular Biology and Evolution, 32(1): 268-274. DOI: 10.1093/molbev/msu300 EDN: YHIWXA
32. Olsson U., Leader P.J., Carey G.J., Khan A.A., Svensson L. and Alström P. 2013. New insights into the intricate taxonomy and phylogeny of the Sylvia curruca complex. Molecular Phylogenetics and Evolution, 67(1): 72-85. DOI: 10.1016/j.ympev.2012.12.023 EDN: YDDQKX
33. van Oort E.D. 1930. Ornithologia Neerlandica: De Vogels van Nederland. Deel 4. Martinus Nijhoff, ’s-Gravenhage, 256 p.
34. Payevsky V.A. 2022. The sylviids of the world avifauna. KMK Scientific Press, Moscow, 161 p. [In Russian].
35. Perna N.T. and Kocher T.D. 1995. Patterns of nucleotide composition at fourfold degenerate sites of animal mitochondrial genomes. Journal of Molecular Evolution, 41(3): 353-358. DOI: 10.1007/BF00186547 EDN: WZBOUW
36. Ponti R., Arcones A., Ferrer X. and Vieites D.R. 2018. Productivity as the main factor correlating with migratory behaviour in the evolutionary history of warblers. Journal of Zoology, 306(3): 197-206. DOI: 10.1111/jzo.12598
37. Ponti R., Arcones A. and Vieites D.R. 2020. Challenges in estimating ancestral state reconstructions: the evolution of migration in Sylvia warblers as a study case. Integrative Zoology, 15(3): 161-173. DOI: 10.1111/1749-4877.12418 EDN: RJSEIL
38. Rodrigues P., Micael J., Resendes R., Lopes R.J., Ramos J.A. and Cunha R.T. 2018. Genetic and morphometric variation of the Blackcap (Sylvia atricapilla) on the Azores Archipelago reveals a recent range expansion. Journal of Natural History, 52(37-38): 2413-2435. DOI: 10.1080/00222933.2018.1539194 EDN: WQGXBD
39. Rozas J., Ferrer-Mata A., Sánchez-DelBarrio J.C., Guirao-Rico S., Librado P., Ramos-Onsins S.E. and Sánchez-Gracia A. 2017. DnaSP 6: DNA sequence polymorphism analysis of large data sets. Molecular Biology and Evolution, 34(12): 3299-3302. DOI: 10.1093/molbev/msx248 EDN: JTRORT
40. Sheikhalikalayeh H.P. and Ghasempouri S.M. 2021. Genealogy of Lesser Whitethroat subspecies (Sylvia curruca halimodendri) in Qeshm Island using a systematic molecular approach. Taxonomy and Biosystematics, 13(1): 46. [In Persian]. DOI: 10.22108/tbj.2021.126436.1143
41. SheykhAlikelayeh H.P. and Ghasempouri S.M. 2023. Subspecies identification of Lesser Whitethroats, Sylvia curruca, wintering in southern Iran as inferred from DNA sequences (Aves: Sylviidae). Zoology in the Middle East, 69(1): 6-12. DOI: 10.1080/09397140.2023.2172843 EDN: QGEECY
42. Shen W., Sipos B. and Zhao L. 2024. SeqKit2: A Swiss army knife for sequence and alignment processing. iMeta, 3(3): e191. DOI: 10.1002/imt2.191
43. Shirihai H., Gargallo G. and Helbig A.J. 2001. Sylvia warblers: identification, taxonomy and phylogeny of the genus Sylvia. Christopher Helm, London, 576 p.
44. Singh T.R., Shneor O. and Huchon D. 2008. Bird mitochondrial gene order: Insight from 3 warbler mitochondrial genomes. Molecular Biology and Evolution, 25(3): 475-477. DOI: 10.1093/molbev/msn003 EDN: ITJUCB
45. Tamura K., Stecher G. and Kumar S. 2021. MEGA11: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 11. Molecular Biology and Evolution, 38(7): 3022-3027. DOI: 10.1093/molbev/msab120 EDN: VZCJPQ
46. Trifinopoulos J., Nguyen L.-T., von Haeseler A. and Minh B.Q. 2016. W-IQ-TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis. Nucleic Acids Research, 44(W1): W232-W235. DOI: 10.1093/nar/gkw256 EDN: IJKIKW
47. Voelker G. and Light J.E. 2011. Palaeoclimatic events, dispersal and migratory losses along the Afro-European axis as drivers of biogeographic distribution in Sylvia warblers. BMC Evolutionary Biology, 11(1): 163. DOI: 10.1186/1471-2148-11-163 EDN: CRQBAU
48. Yang C., Yan R.-J., Wang Q.-X., Xiao H., Li X.-J., Lin L.-L. and Wang Y. 2021a. The first mitogenome of Lesser Whitethroat, Sylvia curruca blythi Ticehurst & Whistler, 1933 (Passeriformes: Sylviidae) and its phylogenetic implications for the genus Sylvia. Mitochondrial DNA Part B, 6(8): 2335-2336. DOI: 10.1080/23802359.2021.1948367 EDN: KRVUBX
49. Yang C., Zhao L., Wang Q., Yuan H., Li X. and Wang Y. 2021b. Mitogenome of Alaudala cheleensis (Passeriformes: Alaudidae) and comparative analyses of Sylvioidea mitogenomes. Zootaxa, 4952(2): 331-353. DOI: 10.11646/zootaxa.4952.2.7 EDN: PDCYWK
50. Zuccon D., Pons J.-M., Boano G., Chiozzi G., Gamauf A., Mengoni C., Nespoli D., Olioso G., Pavia M., Pellegrino I., Raković M., Randi E., Rguibi Idrissi H., Touihri M., Unsöld M., Vitulano S. and Brambilla M. 2020. Type specimens matter: new insights on the systematics, taxonomy and nomenclature of the subalpine warbler (Sylvia cantillans) complex. Zoological Journal of the Linnean Society, 190(1): 314-341. DOI: 10.1093/zoolinnean/zlz169 EDN: FBILET
Выпуск
Другие статьи выпуска
Во второй (заключительной) части статьи обсуждаются биологические и химические данные по пигментам неококцид (надсемейство Coccoidea): Pseudococcidae s. l., Eriococcidae s. l., Kermesidae, Dactylo piidae, Micrococcidae, Asterolecaniidae s. l., Conchaspididae, Phoenicococcidae, Diaspididae, Beesoniidae, Stic to coccidae, Aclerdidae, Coccidae и Kerriidae. Классификация семейств дается по системе Данциг и Гаврилова-Зимина (Danzig 1986; Gavrilov-Zimin 2018, 2025; Gavrilov-Zimin et al. 2021). Особое внимание уделяется малоизвестным в гуманитарной и технологической литературе родам и видам, которые могли быть вовлечены в красильные промыслы в прежние исторические эпохи. К ним относятся некоторые виды родов Antonina, Nipaecoccus, Octococcus, Porococcus, Trabutina (Pseudococcidae), Ceroplastes, Toumeyella (Coccidae) и др. В целом, основываясь на проведенном таксономическом анализе, можно заключить, что разнообразие пигментов кокцид крайне неравномерно распределено среди семейств мировой фауны. Значительная вариативность пигментов обнаруживается уже в самом архаичном семействе Margarodidae s. l. и достигает максимума в семействе Pseudococcidae. С другой стороны, насекомые из некоторых небольших семейств, подсемейств и триб, например, Ortheziidae, Xenococcidae, Rhizoecini, полностью лишены видимых пигментов или же пигментация выражена крайне слабо в виде бледных тонов желтого и зеленого цветов. В крупнейшем семействе Diaspididae не отмечено видимых зеленых пигментов. Многие ложнощитовки (Coccidae) характеризуются видоспецифичным изменением светлой окраски на темную по мере старения особи.
В статье представлено описание новых находок рачка Chydorus cf. biovatus Frey, 1985. Вид обнаружен на Байкале и в его притоке - реке Котинка, а также на Восточно-Европейской равнине, в Среднем Поволжье, где экземпляры C. cf. biovatus были собраны в четырех небольших водоемах в бассейне реки Сура (правый приток Волги) на территории государственного природного заповедника «Присурский». Приведено описание некоторых морфологических признаков, обнаруженных с помощью сканирующей электронной микроскопии у экземпляров из европейской и азиатской частей России. Изученные экземпляры имеют ту же морфологию, что и описанные в литературе из типовой популяции. У самок из байкальской популяции обнаружена некоторая специфичность в вооружении постабдомена. Самцы и самки из Средней Волги имеют те же размеры, что и в других популяциях, а самки из Байкала немного крупнее. Вид был обнаружен только в период открытой воды на обеих территориях. Вид сосуществует с C. baicalensis Smirnov et Sheveleva, 1996 на Байкале и с C. sphaericus (O. F. Müller, 1776) на Средней Волге. На Средней Волге предпочитает теплые, слегка подкисленные воды с низкой соленостью. В популяции из Среднего Поволжья в октябре самцы и самки были представлены в равном количестве, в популяциях из Байкала самцы преобладали над самками.
Многовидовые сообщества землероек (Soricidae) формируют таксоценозы, включающие различающиеся в диетах разноразмерные виды с широко перекрывающимися спектрами питания, что делает их удобной моделью для изучения эволюции современных и палеосообществ, адаптогенеза и динамики морфологического разнообразия. Важным аспектом функционирования таксоценозов является подразделенность трофических ниш, обусловленная биомеханической специализацией жевательного аппарата. В данной работе мы рассматриваем методы количественной оценки относительной жевательной нагрузки височного мускула нижней челюсти землероек (коэффициент MP), с использованием модели рычага первого рода. Мы сравниваем два известных подхода: (1) метод Лесли Карвей, основанный на линейных измерениях, и (2) тригонометрический метод Рафаэля Корнетта, основанный на двумерных координатах точек. Наши результаты, полученные при тестировании обоих подходов на репрезентативном материале по Sorex, Crocidura и Suncus (n = 236), показали, что (i) оба метода требуют некоторой корректировки уравнений, и (ii) значения MP сопоставимы только в пределах каждого подхода, но не между ними. Кроме того, наш анализ представителей Crocidurinae и Soricinae демонстрирует перспективность коэффициента MP как надежного, независимого от размера индикатора адаптаций челюстного аппарата. Мы рассматриваем перспективы изучения корреляций значений MP с различными морфологическими наборами данных, например, с 3D-формой зубов, в контексте динамики многовидовых сообществ в географических и хронографических аспектах. Наше исследование демонстрирует полезность биомеханических индексов (в том числе MP) при выявлении функционального разнообразия в сообществах землероек применительно к эволюционным и палеоэкологическим исследованиям.
В данной работе мы исследуем нижнюю челюсть крупного псового, идентифицированного как Canis etruscus Forsyth Major, 1877 из местонахождения Мухкай 2 (Северо-Восточный Кавказ, Россия). Надежная хронологическая привязка данного образца к интервалу 2.1-1.77 млн лет установлена посредством комплексного изучения геологического контекста местонахождения, включая палеомагнитный, фаунистический и биостратиграфический анализы. Ископаемый материал, целиком заключенный в плотный доломитовый блок, был исследован неразрушающим методом с использованием рентгеновской компьютерной томографии. Цифровая сегментация и виртуальная 3D-реконструкция выявили полностью зажившую прижизненную травму, интерпретированную как перелом нижней челюсти со смещением. Полученный диагноз основан на двух основных остеологических индикаторах: очевидном латеральном смещении щечного зубного ряда, начинающемся дистальнее p4, а также отчетливо выраженной дугообразной деформации ветви нижней челюсти вентральнее альвеолы m1. Аналогичные паттерны переломов у современного Canis lupus Linnaeus, 1758 обычно связаны с высокоэнергетическими травмами, полученными при нападении на крупных копытных. Палеоэтология ранних представителей рода Canis Linnaeus, 1758 остается предметом дискуссий и изучена недостаточно полно. Палеопатологические исследования предоставляют редкую возможность для решения спорных вопросов, касающихся сложных форм поведения древних псовых, таких как коллективная охота и социальная сплоченность. По нашему мнению, обнаружение тяжело травмированной, но выжившей особи из Мухкая 2 предоставляет убедительные и древнейшие свидетельства внутригрупповой заботы в рамках линии Canis. Данная находка убедительно поддерживает гипотезу о том, что C. etruscus уже к концу плиоцена - началу плейстоцена эволюционировал в сторону облигатного дневного стайного хищника, специализировавшегося на охоте на средних по размеру травоядных.
Новый род и новый вид трибы Kodaianellini Wang, Zhang et Bourgoin, 2016 описаны из Сингапура. Обсуждены состав и распространение трибы Kodaianellini и родственные отношения нового рода внутри трибы.
Каудальная автотомия - характерная особенность многих чешуйчатых рептилий, отсутствующая у крокодилов и черепах. Автотомия встречается в большинстве семейств современных ящериц, у некоторых змей, особенно у видов с цепким хвостом, и в большинстве семейств амфисбен. При регенерации хвоста после автотомии у чешуйчатых рептилий остеодермы также регенерируют. Они представляют собой костные структуры, которые развиваются в дермальном слое кожи. Согласно данным о распределении остеодерм на филогенетическом дереве Squamata, наибольшая распространенность дермальной брони отмечена в кладах Scincomorpha и Anguimorpha. Мы проанализировали частоту интравертебральной автотомии и регенерации у безногой ящерицы Харта, Dopasia harti (Boulenger, 1899), которая ранее в этом отношении не изучалась. Мы описываем морфологию остеодерм в интактном и регенерировавшем покрове на основе результатов компьютерной микротомографии. Полученные данные указывают на относительно высокую частоту автотомии у исследуемого вида (78.2%), из этих экземпляров у 50.0% регенерировали хвосты в виде конических придатков. У большинства исследованных экземпляров автотомия происходила в дистальной трети хвоста (65.2%). Остеодермы D. harti являются пластинчатыми и одиночными, образующими сплошной покров, и располагаются в коже с перекрытием. Форма остеодерм варьирует в зависимости от их расположения. В основании и на дорсальной поверхности остеодермы видны отверстия нейроваскулярных каналов. На поперечном срезе видна обширная система костномозговых полостей. На продольных срезах в поверхностном слое остеодермы видны лакуны, содержащие остеоциты, а в базальной коре - исчерченность, отражающая ориентацию коллагеновых волокон. В отличие от интактных, регенерированные остеодермы имеют варьирующую форму от неправильной до почти круглой. Тем не менее они сохраняют структурные особенности, характерные для исходных остеодерм.
Изучение факторов, вызывающих изменения численности популяций, необходимо для понимания функционирования природных экосистем и планирования мероприятий по охране окружающей среды. Важным компонентом литоральных экосистем морей Северного полушария являются моллюски Littorina, однако факторы, определяющие их динамику численности, слабо изучены. В настоящей работе представлены данные, полученные в ходе наблюдений за популяционной динамикой Littorina saxatilis (Olivi, 1792) в период с 2001 по 2020 г. В этот период происходило постепенное снижение плотности популяции литторин, на фоне которого наблюдались квазициклические флуктуации ее численности. Было проанализировано 55 переменных, характеризующих состояние изученной популяции моллюсков и воздействие на нее ключевых экологических факторов. Установлено, что изменения плотности популяции на 81% были обусловлены флуктуациями численности сеголеток. Множественный регрессионный анализ показал, что уровень воспроизводства популяции литторин на 80% определялся изменениями четырех переменных: биомассой L. saxatilis, биомассой совместно обитающего вида Littorina obtusata (Linnaeus, 1758), количеством осадков за год и в июне. Первая переменная отражает процессы, протекающие внутри популяции L. saxatilis. Вторая переменная указывает на важную роль межвидовых взаимодействий с близкородственным видом L. obtusata. Третья и четвертая переменные отражают воздействие климатических факторов. Результаты имитационного моделирования показали, что общая тенденция к снижению воспроизводства популяции L. saxatilis в период исследования была обусловлена воздействием внешних факторов - нарастанием межвидовой конкуренции с L. obtusata и увеличением количества атмосферных осадков. На этом фоне наблюдались квазициклические изменения уровня воспроизводства популяции, обусловленные, по-видимому, внутрипопуляционными механизмами. Количество атмосферных осадков, очевидно, влияет на выживаемость молоди L. saxatilis через изменения солености поверхностного слоя морской воды во время выпадения осадков и при сбросе излишков пресной воды из водохранилищ Нивских ГЭС, расположенных в окрестностях г. Кандалакша.
В статье приведены результаты телеметрических наблюдений за молодым самцом лося. Наблюдаемый самец после первого года жизни в неволе был выпущен в естественную среду обитания в Лодейнопольском районе Ленинградской области. Как мы и предполагали, за 1.5 года наблюдений лось продемонстрировал особенности жизненного цикла и поведения диких сородичей, а именно: (1) у лося были выявлены сезонные участки обитания (летние и зимний), при этом расстояние между этими участками составило около 15 км; (2) лось проявлял тяготение к типичным сезонным стациям (летом - к водно-болотным комплексам ручьев и рек, осенью и зимой - к окраинам верховых болот и участкам с подлеском/подростом из кормовых пород); (3) лось совершал сезонные кочевки (весенняя и осенняя), при этом весенняя «миграция» до территорий летнего участка обитания произошла за одни сутки. Нами зафиксированы статистически значимые различия в активности перемещений между сезонными участками обитания, а также изменения в перемещениях в соответствии с суточными ритмами и периодом гона. В третий год жизни участок обитания лося был больше, чем во второй; лось осуществлял статистически значимо более протяженные суточные перемещения и активнее участвовал в гоне. В 75% случаев суточный ход на территории зимнего участка обитания не превышал 1 км, а суточное перемещение - 300 м. В летние периоды аналогичные значения составляли для 2023 г. соответственно 2800 и 650 м, для 2024 г. - 3700 и 1400 м. Нами отмечено близкое расположение и пересечение летних участков обитания. Результаты кластеризации локаций методом ST-DBSCAN при разных вводных параметрах свидетельствуют о наличии менее 10 сезонно и территориально дифференцированных ядер наиболее интенсивного использования территории. Площади участков обитания, включающие локации из кластеров, не превышают по методу MCP (100%) несколько тысяч гектаров. Площади наиболее интенсивно используемых участков по методу KDE (50%) не превышают нескольких десятков гектаров.
Статья посвящена новым таксономическим и фаунистическим данным о 26 видах пауков подсемейства Lyssomaninae (Salticidae). Диагностировано, иллюстрировано и описано восемь новых видов Lyssomanes: L. admiratio sp. nov. (самцы) из Эквадора; L. atalaya sp. nov. (самки) из Перу; L. longhorni sp. nov. (самцы, самки) из Гондураса; L. pakitza sp. nov. (самка) из Перу; L. silvae sp. nov. (самки, самцы) из Перу; L. singularis sp. nov. (самки, самцы) из Эквадора; L. tarmaenot sp. nov. (самцы) из Перу; и L. yuyapichis sp. nov. (самки) из Перу. Исправлено первоначальное соотнесение полов у L. adisi Logunov, 2002, и впервые описана и иллюстрирована настоящая самка этого вида. Показано, что самки-паратипы L. adisi на самом деле относятся к L. unicolor (Taczanowski, 1871). Для двух видов описаны неизвестная до сих пор самка (L. adisi) и самец (L. waorani Logunov et Marusik, 2003). Приводятся и обсуждаются новые фаунистические данные для 18 видов лиссоманин. Sumakuru bigal Maddison, 2016, ранее известный из Эквадора, впервые описан из Перу после первоописания; уточнен диагноз вида, основанный на морфологических признаках. Также кратко обсуждается современное состояние знаний о Lyssomaninae.
Издательство
- Издательство
- ЗИН РАН
- Регион
- Россия, Санкт-Петербург
- Почтовый адрес
- 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д. 1
- Юр. адрес
- 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д. 1
- ФИО
- Чернецов Никита Севирович (Директор)
- E-mail адрес
- director@zin.ru
- Контактный телефон
- +7 (812) 3280011
- Сайт
- https://zin.ru