Симптом «черный зародыш», распространенное изменение цвета зерна пшеницы и ячменя, отмечается по всему миру в большинстве регионов выращивания данных культур. Существуют жёсткие стандарты по содержанию зерна с черным зародышем в партиях продовольственной пшеницы как в России, так и за рубежом. Механизмы, участвующие в появлении темного пигмента, до сих пор окончательно не выяснены. В настоящем исследовании был проведен анализ средних образцов товарных партий озимой пшеницы из Центрального федерального округа урожая 2024 г., где доля визуально выявленных зерен с черным зародышем составила от 4.3 до 27.0 %. Согласно полученным результатам, процент инфицирования грибами, таксономический состав микобиоты и содержание ДНК двух доминирующих групп грибов Alternaria и Fusarium были высоко сходными во фракциях внешне здорового зерна и зерна с черным зародышем. По нашему мнению, данный симптом обусловлен абиотическими факторами среды, вызывающими физиологическое потемнение тканей зерен, и с большой долей уверенности может быть отнесен к заболеваниям пшеницы, вредоносность которых не доказана.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Растениеводство
Зерно пшеницы часто инфицировано различными микроорганизмами, включая грибы (микромицеты) и бактерии. Высокая зараженность может привести к экономическим потерям, обусловленным низкой урожайностью, ухудшением семенных свойств и снижением качества получаемых на основе зерна продуктов. В зависимости от таксономического положения микроорганизма, сорта пшеницы, продолжительности развития микроорганизма в растении и условий окружающей среды происходит или не происходит проявление визуально заметного инфицирования.
Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.
Список литературы
1. Будынков НИ, Михалева СН (2022) Мониторинг альтернариевых грибов на зерне озимой пшеницы в хозяйствах юга России (2014-2020 гг.). Агрохимия 2:76-82. DOI: 10.31857/S0002188122020041 EDN: MMDCRX ▼ Контекст
2. Гагкаева ТЮ, Гаврилова ОП, Левитин ММ, Новожилов КВ (2011) Фузариоз зерновых культур. Защита и карантин растений (S5):59-120. http://www.z-i-k-r.ru/interest/fuzarioz.pdf. EDN: TZQUYF ▼ Контекст
3. Ганнибал ФБ (2014) Альтернариоз зерна - современный взгляд на проблему. Защита и карантин растений (6):11-15. EDN: SDVVUV ▼ Контекст
4. Ганнибал ФБ (2018) Изучение факторов, влияющих на развитие альтернариоза зерна у злаков, возделываемых в Европейской части России. Сельскохозяйственная биология 53(3):605-615. DOI: 10.15389/agrobiology.2018.3.605rus EDN: QFLAKY ▼ Контекст
5. ГОСТ 26574-2017. Мука пшеничная хлебопекарная. Технические условия. М.: Стандартинформ, 2018. https://meganorm.ru/Data2/1/4293742/4293742186.pdf.
6. ГОСТ 9353-2016. Пшеница. Технические условия. М.: Стандартинформ, 2019. https://meganorm.ru/Data2/1/4293751/4293751950.pdf.
7. ГОСТ ISO 520-2014. Зерновые и бобовые. Определение массы 1000 зерен. Москва, Стандартинформ, 2015. https://files.stroyinf.ru/Data2/1/4293771/4293771423.pdf.
8. Жемчужина НС, Киселева МИ, Лапина ВВ, Елизарова СА (2019) Патогенные и фитотоксические свойства возбудителей корневой гнили и черного зародыша зерновых культур в некоторых районах России. Аграрная наука (S1):142-147. DOI: 10.32634/0869-8155-2019-326-1-142-147 EDN: PYGCVZ ▼ Контекст
9. Кармач АА, Иванова ДА (2024) Встречаемость грибов р. Nigrospora на семенах зерновых культур западной Сибири и их чувствительность к ряду протравителей. Сборник трудов Всероссийской научно-практической конференции Сибирской научной школы по защите растений, посвященной 90-летию со дня рождения В.А. Чулкиной. 46-51. https://elibrary.ru/download/elibrary_65614703_88289620.pdf. ▼ Контекст
10. Кириченко АА (2005) Биологические особенности возбудителей черноты зародыша зерновых культур в лесостепи Приобья. Вестник НГАУ 2(3):41-45. download/elibrary_11769896_22778146.pdf. EDN: JXOOXB ▼ Контекст
11. Кириченко АА, Торопова ЕЮ (2024) Мониторинг черноты зародыша зерна яровой пшеницы в лесостепи Новосибирской Области. Сборник трудов Всероссийской научно-практической конференции Сибирской научной школы по защите растений, посвященной 90-летию со дня рождения В.А. Чулкиной. 55-59. download/elibrary_65614703_88289620.pdf. EDN: EFNMNS ▼ Контекст
12. Лапина ВВ (2012) Снижение вредоносности черного зародыша яровой пшеницы. Вестник Саратовского госагроуниверситета им. Н.И. Вавилова 5:28-30. EDN: OYBCYJ ▼ Контекст
13. Лапина ВВ, Савельев АС, Бочкарев ДВ, Недайборщ ЮН (2020) Распространенность и вредоносность черного зародыша зерновых культур. Вестник Алтайского государственного аграрного университета 6 (188):13-20. EDN: DEUHIK ▼ Контекст
14. Мальчиков ПН, Чахеева ТВ, Мясникова МГ (2022) Исходный материал яровой твёрдой пшеницы для селекции сортов устойчивых к патогенам, вызывающим почернение зародыша зерна. Российская сельскохозяйственная наука 5:13-18. DOI: 10.31857/S2500262722050039 EDN: KIRSOM ▼ Контекст
15. Орина АС, Гаврилова ОП, Гагкаева ТЮ (2023) Характеристика физиолого-биохимических свойств гриба Nigrospora gorlenkoana Novobr., распространённого на зерновых культурах в России. Известия РАН. Серия биологическая 5:1-14. DOI: 10.31857/S1026347022600546 EDN: WCWAPT ▼ Контекст
16. Орина АС, Гаврилова ОП, Гагкаева ТЮ, Ганнибал ФБ (2020) Микромицеты Alternaria spp. и Bipolaris sorokiniana и микотоксины в зерне, выращенном в Уральском Федеральном Округе. Микология и фитопатология 54(5):365-377. DOI: 10.31857/S0026364820050086 EDN: UREAXE ▼ Контекст
17. Сорокин НВ (1890) О некоторых болезнях культурных растений Южно-Уссурийского края. Труды Общества Естеств. при Казанском Университете. Казань: Тип. Казанского университета. 32 с. ▼ Контекст
18. Шабатуков АХ, Хромова ЛМ, Кимова ДА (2022) Видовой состав и частота встречаемости фитопатогенов на посевах озимой пшеницы. Известия Кабардино-Балкарского научного центра РАН 4(108):74-83. DOI: 10.35330/1991-6639-2022-4-108-74-83 EDN: DKZECE ▼ Контекст
19. Al-Sadi AM (2021) Bipolaris sorokiniana-induced black point, common root rot, and spot blotch diseases of wheat: a review. Front Cell Infect Microbiol 11:584899. DOI: 10.3389/fcimb.2021.584899 EDN: ASABKH ▼ Контекст
20. Brennan JM, Fagan B, van Maanen A, Cooke BM et al (2003) Studies on in vitro growth and pathogenicity of European Fusarium fungi. Eur J Plant Pathol 109(6):577-587. https://doi.org/10.1023/A:1024712415326. EDN: EFSLYB ▼ Контекст
21. Chavez A, Kohli M (2013) Identification of fungi in black point disease of wheat. Investigación Agraria 15(2):133-137. ▼ Контекст
22. Christopher MJ, Williamson PM, Michalowitz M, Jennings R et al (2007) Simple sequence repeat markers associated with three quantitative trait loci for black point resistance can be used to enrich selection populations in bread wheat. Aus J Agric Res 58(9):867-873. DOI: 10.1071/AR05435 ▼ Контекст
23. Cipollone MJ, Moya P, Martínez I, Saparrat M et al (2020) Grain discoloration in different genotypes of durum wheat (Triticum durum L.) in Argentina: associated mycobiota and peroxidase activity. J Plant Prot Res 60(1):14-20. DOI: 10.24425/jppr.2020.132200 EDN: VPDJCG ▼ Контекст
24. Clarke MP, Gooding MJ, Jones SA. (2004) The effects of irrigation, nitrogen fertilizer and grain size on Hagberg falling number, specific weight and black point of winter wheat. J Sci Food Agric 84:227-236. DOI: 10.1002/jsfa.1657 ▼ Контекст
25. Conner RL (1989) Influence of irrigation and precipitation on incidence of black point in soft white spring wheat. Can J Plant Pathol 11:388-392. ▼ Контекст
26. Conner RL, Hwang SF, Stevens RR (1996) Fusarium proliferatum: a new causal agent of black point in wheat. Can J Plant Pathol 18:419-423. DOI: 10.1080/07060669609500598 ▼ Контекст
27. Conner RL, Thomas JB (1985) Genetic variation and screening techniques for resistance to black point in soft white spring wheat. Can J Plant Pathol 74:402-407. DOI: 10.1080/07060668509501669 ▼ Контекст
28. Cromey MG, Mulholland RI (1988) Blackpoint of wheat: fungal associations, cultivar susceptibility, and effects on grain weight and germination. New Zeal J Agr Res 31:51-56. DOI: 10.1080/00288233.1988.10421363 ▼ Контекст
29. Desjardins AE, Busman M, Proctor RH, Stessman R (2007) Wheat kernel black point and fumonisin contamination by Fusarium proliferatum. Food Addit Contam 24(10):1131-1137. DOI: 10.1080/02652030701513834 ▼ Контекст
30. Dimmock JPRE, Gooding MJ (2002) The effects of fungicides on Hagberg falling numbers and blackpoint of wheat. Crop Protect 21:475-487. DOI: 10.1016/S0261-2194(01)00135-1 EDN: AXWMST ▼ Контекст
31. El-Gremi SM, Draz IS, Youssef WAE. (2017) Biological control of pathogens associated with kernel black point disease of wheat. Crop Prot 91:13-19. DOI: 10.1016/j.cropro.2016.08.034 ▼ Контекст
32. Ellis MB (1971) Dematiaceous Hyphomycetes. Commonwealth Mycological Institute: Kew, Surrey, UK. 608 p. ▼ Контекст
33. European Union Reference Laboratory for Genetically Modified Food and Feed. Event-specific method for the quantitation of maize line NK603 using real-time PCR - Protocol, 2005, 17p.
34. Fernandez MR, Clarke JM, Depauw RM, Irvine RB et al (2000) Black point reaction of durum and common wheat cultivars grown under irrigation in southern Saskatchewan. Plant Dis 84:892-894. DOI: 10.1094/PDIS.2000.84.8.892 ▼ Контекст
35. Fernandez MR, Conner RL (2011) Black point and smudge in wheat. Prairie Soils and Crops 4: 158-164. ▼ Контекст
36. Fernandez MR, Sissons M, Conner RL, Wang H et al (2011) Influence of biotic and abiotic factors on dark discoloration of durum wheat kernels. Crop Science 51(3):1205-1214. DOI: 10.2135/cropsci2010.07.0433 ▼ Контекст
37. Gagkaeva T, Gavrilova O, Orina A, Lebedin Y et al (2019) Analysis of toxigenic Fusarium species associated with wheat grain from three regions of Russia: Volga, Ural, and West Siberia. Toxins 11(5): 252. DOI: 10.3390/toxins11050252 EDN: LOIBQD ▼ Контекст
38. Gerlach W, Nirenberg HI (1982) The genus Fusarium - a pictorial atlas. Berlin: Dahlem, 406 p. ▼ Контекст
39. Golosna L (2022) Mycobiota of wheat seeds with signs of “black point” under conditions of Forest-Steppe and Forest Zones of Ukraine. Chemistry Proceedings 10(1):93. DOI: 10.3390/IOCAG2022-12236 ▼ Контекст
40. Khani M, Cheong J, Mrva K, Mares D (2018) Wheat black point: Role of environment and genotype. J Cereal Sci 82:25-33. DOI: 10.1016/j.jcs.2018.04.012 ▼ Контекст
41. Kumar J, Schafer P, Huckelhoven R, Langen G et al (2002) Bipolaris sorokiniana, a cereal pathogen of global concern: cytological and molecular approaches towards better control. Mol Plant Pathol 3:185-195. DOI: 10.1046/j.1364-3703.2002.00120.x EDN: BARDRV ▼ Контекст
42. Lehmensiek A, Campbell AW, Williamson PM, Michalowitz M et al (2004) QTLs for black-point resistance in wheat and the identification of potential markers for use in breeding programmes. Plant Breeding 123:410-416. DOI: 10.1111/j.1439-0523.2004.01013.x ▼ Контекст
43. Li Q, Xu K, Wang S, Li M et al (2020) Enzymatic browning in wheat kernels produces symptom of black point caused by Bipolaris sorokiniana. Front Microbiol 11:526266. DOI: 10.3389/fmicb.2020.526266 EDN: THCDPQ
44. Li QY, Qin Z, Jiang YM, Shen CC et al (2014) Screening wheat genotypes for resistance to black point and the effects of diseased kernels on seed germination. J Plant Dis Prot 121:79-88. DOI: 10.1007/BF03356495 EDN: IEBZOT
45. Liu C, Song J, Liu S, Liu J et al. (2021) Molecular mapping and characterization of QBp.caas-3BL for black point resistance in wheat (Triticum aestivum L.). Theor Appl Genet 134:3279-3286. DOI: 10.1007/s00122-021-03893-0 EDN: ZFAQXO ▼ Контекст
46. Liu J, He Z, Rasheed A, Wen W et al (2017) Genome-wide association mapping of black point reaction in common wheat (Triticum aestivum L.). BMC Plant Biol 17(1):220. DOI: 10.1186/s12870-017-1167-3 EDN: INCCAZ ▼ Контекст
47. Lorenz K (1986) Effects of blackpoint on grain composition and baking quality of New Zealand wheat. New Zealand J Agri Res 29(4): 711-718. DOI: 10.1080/00288233.1986.10430468 ▼ Контекст
48. Masiello M, Somma S, Susca A, Ghionna V et al (2020) Molecular identification and mycotoxin production by Alternaria species occurring on durum wheat, showing black point symptoms. Toxins 12:275. DOI: 10.3390/toxins12040275 EDN: VMKJTJ ▼ Контекст
49. Mónaco C, Sisterna M, Perelló A, Bello GD (2004) Preliminary studies on biological control of the black point complex of wheat in Argentina. World J Micro Biotechn 20:285-290. https://doi.org/10.1023/B:WIBI.0000023835.05701.10. ▼ Контекст
50. Moschini RC, Sisterna MN, Carmona MA (2006) Modelling of wheat black point incidence based on meteorological variables in the southern Argentinean Pampas region. Aus J Agric Res 57(11):1151-1156. DOI: 10.1071/ar05275 ▼ Контекст
51. Neshumaeva NA (2003) Black germ of wheat in the conditions of the Krasnoyarsk forest-steppe. BIO Web of Conferences 71(2): 01095. DOI: 10.1051/bioconf/20237101095 EDN: RJWAOL
52. Pavón MÁ, González I, Martín R, García et al (2012) ITS-based detection and quantification of Alternaria spp. in raw and processed vegetables by real-time quantitative PCR. Food Microbiol 32(1):165-171. DOI: 10.1016/j.fm.2012.05.006
53. Qu K, Yin Z, Gao C, Song G et al (2024) Mutagenesis-derived resistance to black point in wheat. Plant Dis 108(4):899-907. DOI: 10.1094/PDIS-07-23-1369-RE EDN: GFLAEY
54. Rees RG, Martin DJ, Law DP (1984) Black point in bread wheat: effects on quality and germination, and fungal associations. Aust J Exp Agric Anim Husb 24(127):601-605. DOI: 10.1071/EA9840601 ▼ Контекст
55. Ruske R, Gooding M, Jones S (2003) The effects of adding picoxystrobin, azoxystrobin and nitrogen to a triazole programme on disease control, flag leaf senescence, yield and grain quality of winter wheat. Crop Protection 22:975-987. DOI: 10.1016/S0261-2194(03)00113-3 EDN: EJZJQJ ▼ Контекст
56. Samson RA, Hoekstra ES, Frisvad JC, Filtenborg O (2002) Introduction to food- and airborne fungi. Sixth Ed. Centraalbureau Voor Schimmelcultures. Utrecht. The Netherlands, 389 p. ▼ Контекст
57. Sesiz U (2023) The screening of black point in commercial bread wheat cultivars grown in Turkey, and the effect of black point on thousand grain weight. Yıl Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi 28(1):230-238. DOI: 10.53433/yyufbed.1170102 ▼ Контекст
58. Sissons M, Sissons S, Egan N (2010) The black point status of selected tetraploid species and Australian durum wheat and breeding lines. Crop Sci 50:1279-1286. DOI: 10.2135/cropsci2009.08.0439 ▼ Контекст
59. Sisterna MN, Sarandon SJ (2005) Preliminary studies on the natural incidence of wheat black point under different fertilization levels and tillage systems in Argentina. Plant Pathol J 4:26-28. DOI: 10.3923/ppj.2005.26.28 ▼ Контекст
60. Walker KR, Able JA, Mather DE, Able AJ (2008) Black point formation in barley: environmental influences and quantitative trait loci. Aus J Agric Res 59(11):1021-1029. DOI: 10.1071/ar08074 ▼ Контекст
61. Wei J, Geng H, Zhang Y, Liu J et al (2015) Mapping quantitative trait loci for peroxidase activity and developing gene-specific markers for TaPod-A1 on wheat chromosome 3AL. Theor Appl Genet 128(10):2067-2076. DOI: 10.1007/s00122-015-2567-0 EDN: VFUSCD ▼ Контекст
62. Williamson PM (1997) Black point of wheat: in vitro production of symptoms, enzymes involved, and association with Alternaria alternata. Aust J Agric Res 48:13-19. DOI: 10.1071/A96068 ▼ Контекст
63. Xu KG, Jiang YM, Li YK, Xu QQ et al (2018) Identification and pathogenicity of fungal pathogens causing black point in wheat on the North China Plain. Indian J Microbiol 58(2):159-164. DOI: 10.1007/s12088-018-0709-1 EDN: YPRYNM
64. Yadav G, Ellis RH (2017) Effects of rain shelter or simulated rain during grain filling and maturation on subsequent wheat grain quality in the UK. J Agric Sci 155(2):300-316.
Выпуск
Другие статьи выпуска
В работе проведена оценка влияния микоризации на экспрессию генов, относящихся к группам генной онтологии GO:0050832 (защитный ответ на грибную инфекцию) и GO:0042742 (защитный ответ на бактериальную инфекцию) при развитии эффективного симбиоза в модельной системе “Medicago lupulina + Rhizophagus irregularis”. Оценка экспрессии генов проведена методом массового анализа концов кДНК (MACE-Seq). В вегетационных условиях при низком уровне доступного для питания растений фосфора в субстрате в листьях M. lupulina выявлена негативная регуляция 44 и 42 генов групп защитного ответа на грибную и бактериальную инфекции, соответственно, в фазу развития второго листа и фазу цветения. Показаны существенно более низкие уровни экспрессии генов (ортологи Medtr1g021100, Medtr1g021110), кодирующих белки устойчивости к мучнистой росе RPW8, при микоризации грибом R. irregularis как в вегетативную, так и в репродуктивную фазы развития растения. Обсуждается роль гриба арбускулярной микоризы в формировании неспецифической реакции на патогенные микроорганизмы при развитии эффективного симбиоза.
В работе представлены результаты выпусков хищных антокорид Orius laevigatus и O. strigicollis против западного цветочного трипса на сенполиях в оранжерее. В зимне-весенний период численность трипсов сократилась до 0.1 трипсов на цветок а биологическая эффективность составила 94 % и 96 % при применении O. laevigatus и O. strigicollis, соответственно. В летний период численность трипсов упала до 0.1 и 0.04 трипсов на цветок, биологическая эффективность составила 95 % и 98 %, соответственно. На эффективность потребления трипсов клопами повлиял сезон выпуска: клопы больше хищничали в летний период, когда температура была выше, что подтверждается данными других исследователей
Ясеневая изумрудная узкотелая златка Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) – опасный инвазионный вредитель ясеней Fraxinus spp. По результатам маршрутного обследования, проведенного в июле 2025 г., приводится первая находка A. planipennis в Республике Карачаево-Черкесия, выявлены новые очаги в Ставропольском крае (в регионе Минеральных Вод), уточнено местонахождение очагов в Краснодарском крае, впервые златка зарегистрирована в городских насаждениях г. Краснодар. В Кабардино-Балкарии и в Адыгее повреждения A. planipennis не обнаружены. Из общего числа выявленных очагов 70 % приходилось на полезащитные и придорожные полосы, два очага были отмечены в скверах и один – в насаждении ботанического сада. Результаты исследования важны для прогнозирования дальнейшего распространения вредителя на Северном Кавказе.
В статье сообщается о первой находке кипарисовой плодожорки (Pammene blockiana) в России. Самцы данного вида были отловлены в Сочи в мае 2025 года при помощи клеевых ловушек с синтетическим половым феромоном карантинного вредителя – восточной плодожорки Grapholita molesta. Всего было отловлено 48 самцов P. blockiana в семь ловушек, установленных в садах и декоративных насаждениях г. Сочи. Вид был идентифицирован по морфологическим признакам (рисунку передних крыльев и строению гениталий), а также при помощи ДНК-баркодинга. Образцы из Сочи показали низкую генетическую изменчивость (0.2 % среди трёх самцов из трёх точек) и сформировали один кластер с образцами вида из Греции с максимальной генетической дистанцией 1.4 %. По фрагменту гена COI митохондриальной ДНК к P. blockiana наиболее близка плодожорка Pammene oxycedrana с минимальной генетической дистанцией 5.4 %, за которой следует Pammene juniperana (7.1 %). Регулярные отловы в феромонные ловушки позволяют предположить, что кипарисовая плодожорка обитает в Сочи и встречается там отнюдь не при низкой численности. Поскольку ее гусеницы повреждают шишки кипариса и можжевельника, вид может представлять потенциальную угрозу для кипарисовых в искусственных насаждениях и в природе вдоль побережья Черного моря. В статье представлены новые данные о распространении вида, приведены фотографии бабочки и гениталий самца P. blockiana, а также фотографии бабочек близких видов. Указаны диагностические признаки кипарисовой плодожорки, позволяющие отличить ее от близкородственных видов, связанных с кипарисовыми в Европе. Обсуждаются возможные экологические последствия и риск дальнейшего распространения P. blockiana.
В работе оценена эффективность энтомопатогенного гриба вида Akanthomyces muscarius против оранжерейной белокрылки Trialeurodes vaporariorum и возбудителя серой гнили Botrytis cinerea. Установлено, что при предварительной обработке листьев томатов конидиями двух изученных штаммов вида A. muscarius, площади поражения серой гнилью были меньше. Наибольшее сдерживающее воздействие на развитие серой гнили отмечено для штамма Vl 61. Этот же штамм при обработке целых растений томатов наиболее эффективно подавлял развитие заболевания на 4 сутки, и в дальнейшем растения развивались на уровне контрольных. При заражении листьев томата B. cinerea, предварительно заселенных T. vaporariorum, смертность белокрылки от обработки спорами Vl 61 составила 69 % на 4-е сутки, что на 50 % выше, чем в отсутствие B. cinerea. Эффективность A. muscarius в отношении фитопатогена в присутствии личинок белокрылки была существенно ниже, чем на незаселенных белокрылкой растениях. С помощью флуоресцентной микроскопии доказаны гиперпаразитические свойства A. muscarius в отношении B. cinerea и установлено, что при совместном росте штамма Vl 61* (меченого флуоресцентной меткой) и возбудителя серой гнили на агаризованной среде гифы ЭПГ обвивают гифы B. cinerea, и проникают внутрь, разрастаются и выходят наружу, разрушая клеточные стенки фитопатогена. Полученные результаты позволяют говорить о перспективности применения штамма Vl 61 вида A. muscarius для защиты томатов от B. cinerea и T. vaporariorum.
Условно-патогенная бактерия Erwinia rhapontici вызывает розовый бактериоз зерна пшеницы и ржи, существенно снижая качество зерновой продукции, что ограничивает экспорт зерна из Российской Федерации. Выделение чистой культуры бактерии необходимо для эффективной диагностики патогена с целью предотвращения его распространения. Присутствие E. rhapontici в зараженном растении в составе бактериального комплекса требует использования селективных факторов, таких как антибиотики. Изолируемый объект должен быть устойчивым к антибиотикам, используемым в питательной среде. В настоящем исследовании проведено определение устойчивости штаммов VNIIKR-B-0065 из Sorbus aucuparia и VNIIKR-B-0102 из Triticum durum к различным антибиотикам с применением диско-диффузионного метода и метода жидких сред. При использовании дисков с антибиотиками, наименьший уровень ингибирования роста целевой бактерии отмечен в вариантах с тилозином и ампициллином, что делает их перспективными для добавления в состав селективной питательной среды. Энрофлоксацин, цефтазидим, амикацин, ципрофлоксацин, меропенем, цефоперазон и тетрациклин статистически достоверно ингибировали рост E. rhapontici. Меропенем и энрофлоксацин подавляли рост патогена сильнее всего. В жидкой среде в присутствии 2,3,5-трифенилтетразолия хлористого как стандартного индикатора окислительно-восстановительной реакции, были определены перспективные для использования в составе селективной питательной среды антибиотики и установлены их оптимальные концентрации, не влияющие на рост целевой бактерии. Ими являются ампициллин 0.1 мг/л, бацитрацин 100 мг/л, ванкомицин 0.1 мг/л, касугамицин 25 мг/л, новобиоцин 2.5 мг/л, пенициллин G 3 мг/л, тетрациклин 50 мг/л и тилозин 50 мг/л. Отмечено количественное различие в устойчивости к антибиотикам между двумя штаммами E. rhapontici, что может быть связано с их специфическими генетическими свойствами. Полученные результаты заложили основу для исследования большого числа изолятов E. rhapontici, для разработки окончательного состава селективной среды.
Несмотря на то, что болезням подсолнечника уделяется значительное внимание, в литературе встречаются неточности в названиях болезней, оценке их практической значимости и в употреблении научных названий видов-возбудителей. Это вызывает путаницу и снижает информативность данных о фитосанитарной обстановке. Данный обзор является продолжением серии работ, посвящённых болезням пшеницы, ячменя и картофеля. В работе приводится структурированная информация об основных заболеваниях подсолнечника и вызывающих их патогенных грибах, а также о грибах, представляющих потенциальный вред. Приведён актуальный таксономический статус видов грибов и грибоподобных организмов, связанных с подсолнечником, а также кратко описаны их распространённость и степень влияния на урожай. Микромицеты разделены на две группы по их фитосанитарной значимости: первая включает возбудителей 15 наиболее важных болезней подсолнечника, вторая — виды, вызывающие 13 малозначимых или недостаточно изученных заболеваний с неподтверждённой вредоносностью. Данные о потенциальной опасности этих грибов, во многих случаях остаются противоречивыми, а имеющаяся информация, по-видимому, требует подтверждения. Представленный обзор может служить в качестве справочника для более точного и корректного описания фитосанитарной ситуации. Также он поможет в будущем с использованием молекулярных методов проводить более нацеленные исследования для уточнения таксономии и ареалов грибов, ассоциированных с подсолнечником, и для получения более детальных данных о вредоносности болезней этой культуры.
Головнёвые грибы рода Tilletia – распространенные и вредоносные патогены пшеницы во всем мире. В последнее десятилетие, в связи с расширением зон органического земледелия, отмечается нарастание их значимости, что предопределяет необходимость усиления внимания к этой проблеме. Представлен обзор литературных данных по грибам рода Tilletia (T. caries, T. laevis, T. controversa) – возбудителям твердой и карликовой головни пшеницы. Проанализированы биологические и экологические особенности патогенов, морфология спор, симптоматика болезней, исторические аспекты их изучения в России и за рубежом. Обсуждаются фитопатологические и молекулярные методы диагностики возбудителей головневых заболеваний рода Tilletia. Показаны ограничения фитопатологической диагностики, связанные с морфологическим сходством телиоспор возбудителей твердой и карликовой головни. Проведен критический анализ развития молекулярных подходов к идентификации – от биохимических методов и анализа консервативных генетических локусов (ITS, IGS и пр.) до методов случайного геномного профилирования (RAPD, ISSR и пр.), MALDI-TOF масс-спектрометрии, изотерической амплификации (LAMP) и высокопроизводительного секвенирования (NGS). Особое внимание уделено проблеме недостаточной специфичности и воспроизводимости многих молекулярных методов, включая SCAR-маркеры. Анализ литературных данных дополнен оригинальными результатами по проращиванию спор T. caries и T. controversa и апробации SCAR-маркера для идентификации возбудителя карликовой головни пшеницы.
Издательство
- Издательство
- ВИЗР
- Регион
- Россия, Санкт-Петербург
- Почтовый адрес
- Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 3
- Юр. адрес
- Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 3
- ФИО
- Ганнибал Филипп Борисович (Директор)
- E-mail адрес
- info@vizr.spb.ru
- Контактный телефон
- +7 (812) 4705110
- Сайт
- http:/vizrspb.ru