Несмотря на то, что болезням подсолнечника уделяется значительное внимание, в литературе встречаются неточности в названиях болезней, оценке их практической значимости и в употреблении научных названий видов-возбудителей. Это вызывает путаницу и снижает информативность данных о фитосанитарной обстановке. Данный обзор является продолжением серии работ, посвящённых болезням пшеницы, ячменя и картофеля. В работе приводится структурированная информация об основных заболеваниях подсолнечника и вызывающих их патогенных грибах, а также о грибах, представляющих потенциальный вред. Приведён актуальный таксономический статус видов грибов и грибоподобных организмов, связанных с подсолнечником, а также кратко описаны их распространённость и степень влияния на урожай. Микромицеты разделены на две группы по их фитосанитарной значимости: первая включает возбудителей 15 наиболее важных болезней подсолнечника, вторая — виды, вызывающие 13 малозначимых или недостаточно изученных заболеваний с неподтверждённой вредоносностью. Данные о потенциальной опасности этих грибов, во многих случаях остаются противоречивыми, а имеющаяся информация, по-видимому, требует подтверждения. Представленный обзор может служить в качестве справочника для более точного и корректного описания фитосанитарной ситуации. Также он поможет в будущем с использованием молекулярных методов проводить более нацеленные исследования для уточнения таксономии и ареалов грибов, ассоциированных с подсолнечником, и для получения более детальных данных о вредоносности болезней этой культуры.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Растениеводство
Подсолнечник (Helianthus annuus L.) является одной из важнейших масличных культур с высокой экономической рентабельностью, широко выращиваемой как на территории России и стран бывшего СССР (Украина, Белоруссия, Молдавия, Казахстан), так и в других странах мира. Рост посевных площадей культуры и изменение климатических условий приводит к распространению болезней, вызываемых грибами и грибоподобными организмами. Известно немало случаев, когда заболевания, особенно при эпифитотиях, в несколько раз снижали урожай подсолнечника, резко ухудшали качество семян и содержащегося в них масла, поэтому о болезнях подсолнечника изданы обзоры, справочники и атласы (например, Лукомец и др., 2011; Ходенкова, Белова, 2018 и другие).
Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.
Список литературы
1. Антонова ТС, Арасланова НМ, Саукова СЛ (2002б) Распространение фузариоза подсолнечника в Краснодарском крае. Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 3: 6-8. ▼ Контекст
2. Антонова ТС, Маслиенко ЛВ, Мурадосилова НВ, Саукова СЛ (2002а) Виды грибов из рода Фузариум, встречающиеся на подсолнечнике в Краснодарском крае, и их патогенность. Современная микология в России. Первый съезд микологов России. Тезисы докладов:171. ▼ Контекст
3. Арасланова НМ, Антонова ТС, Ивебор МВ, Хатнянский ВИ (2019) Определение расовой принадлежности изолятов ржавчины (Puccinia helianthi Schwein.), поражающей подсолнечник в некоторых регионах России. Масличные культуры 4 (180): 107-112. DOI: 10.25230/2412-608X-2019-4-180-107-112 EDN: ZLPUBA ▼ Контекст
4. Арасланова НМ, Антонова ТС, Саукова СЛ, Ивебор МВ (2023) Разнообразие биотипов возбудителя ржавчины подсолнечника в регионах Российской Федерации. Аграрная наука Евро-Северо-Востока 24(5):792-798. DOI: 10.30766/2072-9081.2023.24.5.792-798 EDN: LZUCTL ▼ Контекст
5. Арасланова НМ, Антонова ТС, Саукова СЛ, Ивебор МВ (2024) О возбудителях ржавчины подсолнечника (обзор). Масличные культуры 3 (199):63-72. Х-2024-3-199-63-72. 63-72. DOI: 10.25230/2412-608 EDN: IQHHTC ▼ Контекст
6. Бородин СГ, Котлярова ИА, Соснина ЮМ (2007) Грибы рода Rhizopus Ehrenb. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур 2 (137):55-57. EDN: KLRUWT ▼ Контекст
7. Бородин СГ, Котлярова ИА, Терещенко ГА, Соснина ЮМ (2013) Cухая гниль подсолнечника и дополнительные дифференцирующие признаки видов рода Rhizopus Ehrenb. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур 1 (153-154): 124-131. EDN: QCHNPV ▼ Контекст
8. Бородин СГ, Котлярова ИА (2006) Грибные болезни подсолнечника в Краснодарском крае. В кн. Пивень ВТ (ред) Болезни и вредители масличных культур: сб. науч. работ. Краснодар: ВНИИМК:3-10. EDN: XSSQEX ▼ Контекст
9. Бородин СГ, Котлярова ИА, Терещенко ГА (2012) Видовой состав грибов рода Rhizopus Ehrenb. на подсолнечнике. Масличные культуры Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур 2: 152-157. EDN: NXSXCW ▼ Контекст
10. Выприцкая АА, Кузнецов АА (2020) Ржавчина на посевах подсолнечника в Тамбовской области. Вестник Мичуринского государственного аграрного университета 3 (62): 26-29. EDN: MKVCUY ▼ Контекст
11. Выприцкая АА, Кузнецов АА, Зеленёва ЮВ, Козачек АВ (2018) Методы искусственного заражения подсолнечника грибами рода Rhizopus Ehrenb. Вопросы современной науки и практики. Университет имени В. И. Вернадского (2):28-33. DOI: 10.17277/voprosy.2018.02.pp.028-033 EDN: YAAZDN ▼ Контекст
12. Выприцкая АА, Кузнецов АА, Мустафин ИИ, Мазурина ЗИ и др (2015) Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary в Тамбовской области. Вестник Тамбовского университета 20(1): 194-198. EDN: UZAWQV ▼ Контекст
13. Выприцкая АА, Кузнецов АА, Пучнин АМ (2014а) Базидиальные грибы - патогены подсолнечника в Тамбовской области. Вестник Тамбовского университета 19(6):2013-2017. EDN: THEUWR ▼ Контекст
14. Выприцкая АА, Кузнецов АА, Пучнин АМ, Мустафин ИИ и др (2014) Грибы рода Rhizopus Ehrenb. на подсолнечнике в Тамбовской области. Вестник Тамбовского университета 19(3): 1029-1034. EDN: SJSQLR ▼ Контекст
15. Выприцкая АА, Пучнин АМ, Кузнецов АА (2011) Редко встречающиеся в Тамбовской области патогены подсолнечника. Вестник Тамбовского университета 16 (6):1586-1588. EDN: OKBNGF ▼ Контекст
16. Выприцкая АА, Пучнин АМ, Кузнецов АА (2012) Возбудители потенциально опасных болезней подсолнечника. Вестник Тамбовского университета 17(2):764-767. EDN: OXLLZZ ▼ Контекст
17. Выприцкая АА, Пучнин АМ, Кузнецов АА (2013) Факторы, не способствующие распространению и развитию фомопсиса в Тамбовской области. Вестник Тамбовского университета 18 (4):1261-1265. EDN: QBBRIL ▼ Контекст
18. Вронских МД (1981) Защита подсолнечника от болезней при индустриальной технологии. Масличные культуры 3: 34-37. ▼ Контекст
19. Ганнибал ФБ (2011) Видовой состав, систематика и география возбудителей альтернариозов подсолнечника в России. Вестник защиты растений 1:13-19. EDN: OCQOCV ▼ Контекст
20. Децына АА, Терещенко ГА, Илларионова ИВ (2018) Распространённость ржавчины на сортах подсолнечника в условиях Краснодарского края. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур 2(174):101-106. DOI: 10.25230/2412-608X-2018-2-174-101-106 EDN: XTCVPV ▼ Контекст
21. Децына АА, Хатнянский ВИ, Илларионова ИВ, Арасланова НМ и др (2021) Мониторинг болезней на сортах подсолнечника селекции ВНИИМК. Масличные культуры 1(185): 67-72. Х-2021-1-185-67-72. DOI: 10.25230/2412-608 EDN: PPOSZV ▼ Контекст
22. Ивебор МВ, Антонова ТС, Арасланова НМ, Саукова СЛ и др. (2022) Состояние популяции возбудителя ложной мучнистой росы подсолнечника в регионах Российской Федерации. Аграрная наука Евро-Северо-Востока 23 (1):90-97. DOI: 10.30766/2072-9081.2022.23.1.90-97 EDN: LPIEFE ▼ Контекст
23. Ивебор МВ, Антонова ТС, Саукова СЛ (2013) К вопросу о возбудителях альтернариоза подсолнечника. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур1:(153-154). ▼ Контекст
24. Илюхина МК (1988) Болезни подсолнечника в ЦЧР. Защита растений 8:16-17. ▼ Контекст
25. Кочетков ВВ (1991) Некоторые биологические особенности и вредоносность серой гнили подсолнечника: Автореф. дисс. … к.б.н. Л. 17 с. EDN: ZJLAHH ▼ Контекст
26. Кукин ВФ (1982) Болезни подсолнечника и меры борьбы с ними. М.: Колос. 79 с. ▼ Контекст
27. Лепешко ЕС (2021) Ржавчина подсолнечника (Puccinia helianthi Schwein) (обзор литературы) Зерновое хозяйство России 3 (75):88-92. DOI: 10.31367/2079-8725-2021-75-3-88-92 EDN: RDZBDO ▼ Контекст
28. Лукомец ВМ, Пивень ВТ, Тишков НМ (2011) Болезни подсолнечника. В кн.: Лукомец ВМ (ред). ВНИИМК. 210 с. EDN: VMXSMX ▼ Контекст
29. Лукомец ВМ, Пивень ВТ, Тишков НМ, Шуляк ИИ (2008) Защита подсолнечника. Защита и карантин растений 2:78-108. ▼ Контекст
30. Мурадасилова НВ (2006) Влияние поражения склеротиниозом подсолнечника на посевные качества семян. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур 2 (135):61-66. ▼ Контекст
31. Нелен ЕС (1977) Новые виды пикнидиальных грибов с юга Дальнего Востока. Новости систематики низших растений 14:103-106.
32. Павлюк НТ, Павлюк ПН, Фомин ЕВ (2006) Подсолнечник в Центрально-Черноземной зоне России: монография. Воронеж: ФГОУ ВПО ВГАУ. 226 с. EDN: WVVEVP ▼ Контекст
33. Пивень ВТ, Бородин СГ, Шуляк ИИ, Мурадасилова НВ (2013) Фомопсис - опасная болезнь подсолнечника. Защита и карантин растений 7:30-34. ▼ Контекст
34. Пыстина КА (1998) Определитель грибов России. Класс Оомицеты. Выпуск 2. Род Pythium Pringsh. СПб.: Наука. 126 с. EDN: YKCKRZ ▼ Контекст
35. Рогожева МФ, Коченкова КГ (1981) Белая и серая гнили подсолнечника. Защита растений 5: 20-21. ▼ Контекст
36. Саенко ГМ, Зеленцов СВ, Пивень ВТ (2009) Царство грибов в системе организмов и современное определение вида Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур 1 (140):105-113. EDN: JMFLML ▼ Контекст
37. Саукова СЛ, Антонова ТС, Арасланова НМ, Ивебор МВ (2023) Сохранение штаммов грибов из рода Fusarium, поражающих подсолнечник, в культуре на разных субстратах и температурных режимах. Масличные культуры 1 (193):67-72. Х-2023-1-193-67-72. DOI: 10.25230/2412-608 EDN: JWVFPN ▼ Контекст
38. Тихонов ОИ (1975) Болезни подсолнечника В кн.: Пустовойт ВС (ред) М.: Колос. 391-425. ▼ Контекст
39. Ходенкова АМ, Белова ЕС (2018) Фитосанитарное состояние посевов подсолнечника масличного в Республике Беларусь. Защита растений (42):363-369. ▼ Контекст
40. Шинкарев ВП, Масленникова ТИ, Дайнеко ТС, Кобилева ЭА (1990) Распространение болезней подсолнечника и борьба с ними за рубежом. М. 72 с. ▼ Контекст
41. Якуткин ВИ, Саулич МИ (2016) Фитосанитарные риски болезней и заразихи в ареалах подсолнечника России, Украины, Молдавии и Казахстана. Вестник защиты растений 2(88):15-21. EDN: WOSODX ▼ Контекст
42. Abdullah SK, Abbas BA (2008) Fungi inhabiting surface sediments of Shatt Al-Arab River and its creeks at Basrah, Iraq. Basrah J Sci 26 (1):68-81. ▼ Контекст
43. Abdullah SK, Al-Mosawi KA (2010) Fungi associated with seeds of sunflower (Helianthus annuus L.) cultivars grown in Iraq. Phytopathol 57:11-20. ▼ Контекст
44. Abdullah SK, Saadullah AA (2013) Soil mycobiota at grapevine plantations in Duhok, North Iraq. Mesop J Agric 41 (1):437-447. ▼ Контекст
45. Abdullah SK, Zora SE (1993) Soil microfungi from date palm plantations in Iraq. Basrah J Sci 11 (1): 45-57. ▼ Контекст
46. Abeywickrama PD, Jayawardena RS, Zhang W, Hyde KD et al. (2020) Rhizopus arrhizus (syn. R. oryzae) causing sunflower head rot in Hebei Province, China. Plant Dis 104(10): 2732. DOI: 10.1094/PDIS-10-19-2228-PDN EDN: PFZADE ▼ Контекст
47. Addrah ME, Zhang Y, Zhang J, Liu L et al (2020) Fungicide treatments to control seed-borne fungi of sunflower seeds. Pathogens 9:29. DOI: 10.3390/pathogens9010029 ▼ Контекст
48. Acimovic M (1983) Prouzrokovaci bolesti suncokreta i njihovo suzbijanje. Beograd: Nolit.104 p. ▼ Контекст
49. Allen SJ, Brown JF (1980) White blister, petiole greying and defoliation of sunflowers caused by Albugo tragopogonis. Australas Plant Pathol 9:8-9. ▼ Контекст
50. Asgharipour MR (2012) Identification of resistance to Pythium ultimum in sunflower seedlings. Curr Res J Biol Sci 4(3):273-274. ▼ Контекст
51. Ayad D, Aribi D, Hamon B, Kedad A et al (2019) Distribution of large-spored Alternaria species associated with early blight of potato and tomato in Algeria. Phytopathol Mediterr 58 (1):139-149. DOI: 10.13128/Phytopathol_Mediterr-23988 EDN: EXOTBH ▼ Контекст
52. Azbukina ZM, Nikolaeva MI (1970) Puccinia xanthii Schwein. v SSSR. Novosti sistematiki nizshikh rasteniy. Leningrad: Nauka. 232-234 (In Russian). ▼ Контекст
53. Beckerman J, Nisonson H, Albright N, Creswell T (2017) First report of Pythium aphanidermatum crown and root rot of industrial hemp in the United States. Plant Dis 106 (3):1076. DOI: 10.1094/PDIS-09-16-1249-PDN ▼ Контекст
54. Bermudez JMM, Singh N, Ramirez R, Porchas MA et al (2024) First report of Rhizopus arrhizus (syn. R. oryzae) causing sunflower head rot in Arizona, USA. Plant Dis 108 (11):3417. DOI: 10.1094/PDIS-01-24-0099-PDN ▼ Контекст
55. Bhutta AR, Bhatti MR, Ahmad I (1997) Study on pathogenicity of seed-borne fungi of sunflower in Pakistan. Helia 20 (27):57-66. ▼ Контекст
56. Boland GJ, Hall R (1994) Index of plant hosts of Sclerotinia sclerotiorum. Can J Plant Pathol 16:93-108. ▼ Контекст
57. Bragard C, Dehnen-Schmutz K, Di Serio F, Gonthier P et al (2019) Pest categorisation of Phymatotrichopsis omnivore. EFSA J 17(3):1-33. DOI: 10.2903/j.efsa.2019.5619 ▼ Контекст
58. Brand SI, Heldwein AB, Radons SZ, da Silva JR et al (2018) Severity of Septoria leaf spot and sunflower yield due to leaf wetness duration. J Agric Sci 10(10):178-186. DOI: 10.5539/jas.v10n10p178 ▼ Контекст
59. Braun U, Kiehr M, Delhey R (2000) Some new records of powdery mildew fungi from Argentina. Sydowia 53(1):34-43. ▼ Контекст
60. Byrne J (2006) White smut - Entyloma polysporum. Michigan State diagnostic services - online publication. www.pestid.msu.edu/white-smut-entyloma-polysporum. ▼ Контекст
61. Callaway MB, Phatak SC, Wells HD (1985) Studies on alternate hosts of the rust Puccinia canaliculata, a potential biological control agent for nutsedges. Plant Dis 69:924-926. ▼ Контекст
62. Carson ML (1985) Epidemiology and yield losses associated with Alternaria leaf blight of sunflower. Phytopathol 75:1151-1156. ▼ Контекст
63. Cho HS, Yu SH (2000) Three Alternaria species pathogenic to sunflower. Plant Pathol J 16 (6): 331-334. ▼ Контекст
64. Cotuna O, Paraschivu M, Sărățeanu V (2022) Charcoal rot of the sunflower roots and stems (Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid.) An Overview. Sci Papers Ser Manag, Econom Eng in Agric and Rural Dev 22 (1):107-116. ▼ Контекст
65. Crepel C, Inghelbrecht S, Bobev SG (2006) First report of white rust caused by Albugo tragopogonis on sunflower in Belgium. Plant Dis 90(3):379. DOI: 10.1094/PD-90-0379A ▼ Контекст
66. Dirac MF, Nolan P, Menge JA, Paulus AO (1999) First report of Entyloma polysporum (Helianthus annuus) on sunflower in southern California. Plant Dis 83:396. DOI: 10.1094/PDIS.1999.83.4.396A ▼ Контекст
67. Ekins MG, Hayden HL, Aitken EAB, Goulter KC (2011) Population structure of Sclerotinia sclerotiorum on sunflower in Australia. Australas Plant Pathol 40:99-108. DOI: 10.1007/s13313-010-0018-6 EDN: PUXFIA ▼ Контекст
68. EPPO Global Database (2025) https://gd.eppo.int. ▼ Контекст
69. Farr DF, Bills GF, Chamuris GP, Rossman AY (1989) Fungi on plants and plant products in the United States. St. Paul, Minnesota: APS Press. 1252 p. ▼ Контекст
70. Farr DF, Rossman AY (2025) USDA Fungal Database, US National Fungus Collections. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/(19.09.2025). ▼ Контекст
71. Gagkaeva TYu, Orina AS, Gomzhina MM, Gavrilova OP (2023) Fusarium bilaiae - a new cryptic species of Fusarium fujikuroi complex, associated with sunflower. Mycologia 115:6: 787-801. DOI: 10.1080/00275514.2023.2259277 EDN: DJCNZZ ▼ Контекст
72. Gannibal PB, Orina AS, Mironenko NV, Levitin MM (2014) Differentiation of the closely related species, Alternaria solani and A. tomatophila, by molecular and morphological features and aggressiveness. Eur J Plant Pathol 139:609-623. DOI: 10.1007/s10658-014-0417-6 EDN: UGIYIX ▼ Контекст
73. Gannibal PB, Orina AS, Gasich EL (2022) A new section for Alternaria helianthiinficiens found on sunflower and new asteraceous hosts in Russia. Mycol Prog 21(2):34. DOI: 10.1007/s11557-022-01780-6 EDN: FZEQXA ▼ Контекст
74. Garcia-Carneros AB, Garcia-Ruiz R, Molinero-Ruiz L (2014) Genetic and molecular approach to Verticillium dahliae infecting sunflower. Helia 37 (61): 205-214. DOI: 10.1515/helia-2014-0014 ▼ Контекст
75. Gascuel Q, Martinez Y, Boniface Marie-Claude, Vear F et al (2014) The sunflower downy mildew pathogen Plasmopara halstedii. Mol Plant Pathol 16(2):109-122. DOI: 10.1111/mpp.12164 ▼ Контекст
76. Ghoneem KM, Ezzat SM, El-Dadamony NM (2014) Seed-borne fungi of sunflower in Egypt with reference to pathogenic effects and their transmission. Plant Pathol J 13: 278-284. DOI: 10.3923/ppj.2014.278.284 ▼ Контекст
77. Gomzhina MM, Gannibal PB (2022) Diaporthe species infecting sunflower (Helianthus annuus) in Russia, with the description of two new species. Mycologia 114(3):556 -574. DOI: 10.1080/00275514.2022.2040285 EDN: YGOGPM ▼ Контекст
78. Gulya TJ, Charlet LD (2007) First report of Puccinia xanthii on sunflower in North America. Plant Dis 86(5):564. DOI: 10.1094/PDIS.2002.86.5.564A ▼ Контекст
79. Gulya T, Rashid K, Masirevic S (1997) Sunflower diseases. In: Sunflower Technology and Production. Ed. by Schneiter AA. American Society Agronomy. Madison: WI. 35 p. DOI: 10.2134/agronmonogr35.c6 ▼ Контекст
80. Gulya TJ, Stegmeier WD (2007) First report of Puccinia canaliculata on sunflower. Plant Dis 86(5):559. DOI: 10.1094/PDIS.2002.86.5.559B ▼ Контекст
81. Gulya TJ, Viranyi F, Appel J, Jardine D et al (2002) First report of Albugo tragopogonis on cultivated sunflower in North America. Plant Dis 86(5):559. DOI: 10.1094/PDIS.2002.86.5.559A ▼ Контекст
82. Harveson RM, Markell SG, Block CC, Gulya TJ (2016) Compendium of sunflower diseases and pests. 140 p. DOI: 10.1094/9780890545096 ▼ Контекст
83. Hedgecock GG (1928) A key to the known aecial forms of Coleosporium occurring in the United States and a list of the host species. Mycologia 20:97-100. ▼ Контекст
84. Ioos R, Fourrier C, Wilson V, Webb K et al (2012) An optimized duplex real-time PCR tool for sensitive detection of the quarantine oomycete Plasmopara halstedii in sunflower seeds. Phytopathol 102:908 -917. DOI: 10.1094/PHYTO-04-12-0068-R ▼ Контекст
85. Irum M (2009) Sunflower disease and insect pests in Pakistan: А review. Afr Crop Sci J 2: 109-118. DOI: 10.4314/acsj.v17i2.54204 ▼ Контекст
86. Lakshmidevi N, Sudisha J, Mahadevamurthy S et al (2010) First report of the seed-borne nature of root and collar rot disease caused by Rhizoctonia solani in sunflower from India. Australas Plant Dis 5:11-13. DOI: 10.1071/DN10005 EDN: FILVOM ▼ Контекст
87. Lava SS, Zipper R, Spring O (2015) Sunflower white blister rust - Host specificity and fungicide effects on infectivity and early infection stages. Crop Prot 67:214-222. DOI: 10.1016/j.cropro.2014.10.019 ▼ Контекст
88. Li T, Xie AR, Yang ZY, Yi RH (2024) Pythium aphanidermatum causing seedling damping-off of Hylocereus megalanthus in China. Plant Dis 108(7):2241. DOI: 10.1094/PDIS-01-24-0204-PDN EDN: ZFOXBW
89. Lodhi AM, Khanzada M A, Shahzad S, Ghaffar A (2013) Prevalence of Pythium aphanidermatum in agro-ecosystem of Sindh province of Pakistan. Pak J Bot 45(2):635 - 642. ▼ Контекст
90. Maldaner IC, Heldwein AB, Bortoluzzi MP, Loose LH et al (2015) Irrigation and fungicide application on disease occurrence and yield of early and late sown sunflower. Braz J Agric Environ Eng 19 (7): 630-635. DOI: 10.1590/1807-1929/agriambi.v19n7p630-635 ▼ Контекст
91. Markell S, Gulya T, McKay K, Hutter M et al (2009) Widespread occurrence of the aecial stage of sunflower rust caused by Puccinia helianthi in North Dakota and Minnesota in 2008. Plant Dis 93:668. DOI: 10.1094/PDIS-93-6-0668C ▼ Контекст
92. Martin-Sanz A, Rueda S, Garcia-Carneros AB, Molinero-Ruiz L (2018б) Cadophora malorum: a new pathogen of sunflower causing wilting, yellowing, and leaf necrosis in Russia. Plant Dis 102:823. DOI: 10.1094/PDIS-08-17-1182-PDN ▼ Контекст
93. Martin-Sanz A, Rueda S, Garcia-Carneros AB, Gonzalez-Fernandez S et al (2018а) Genetics, host range, and molecular and pathogenic characterization of Verticillium dahliae from sunflower reveal two differentiated groups in Europe. Frontiers in Plant Sci 9:288. DOI: 10.3389/fpls.2018.00288 ▼ Контекст
94. Mathew FM, Gulya TJ, Jordahl JG, Markell SG (2018) First report of stem disease of soybean (Glycine max) caused by Diaporthe gulyae in North Dakota. Dis Notes. 102:240. DOI: 10.1094/PDIS-04-17-0506-PDN ▼ Контекст
95. Markell S, Gulya T, McKay K, Hutter M et al (2009) Widespread occurrence of the aecial stage of sunflower rust caused by Puccinia helianthi in North Dakota and Minnesota in 2008. Plant Dis 93(6):668. DOI: 10.1094/PDIS-93-6-0668C ▼ Контекст
96. Narasimhan RG, Rajagopalan K (1979) Effect of different liquid media on growth and sporulation of Alternaria helianthicola Rao and Raj causing a new leaf spot of sunflower. Sci Cult 45: 243-244. ▼ Контекст
97. Nwe ZM, Htut KN, Aung SLL, Gou YN et al (2024) Two novel species and a new host record of Alternaria (Pleosporales, Pleosporaceae) from sunflower (Compositae) in Myanmar. MycoKeys 7(105):337-354. DOI: 10.3897/mycokeys.105.123790 EDN: OKFLPA ▼ Контекст
98. Penaud A, Perny A (1995) La rouille blanche du tournesol. Phytoma Def Végét 471:43-45. ▼ Контекст
99. Peres A, Poisson B, Drolon G (2000) Le syndrome ‘pieds secs’ du tournesol: étude des causes et approche de la nuisibilité. In Proceedings of the 15th international sunflower conference. Toulouse: ISA. 2: 17-21. ▼ Контекст
100. Petrov M, Arsenijevic M (1996) Septoria leaf speck, a new disease caused by Septoria helianthina sp. nov. J Phytopathol 144:337-346. ▼ Контекст
101. Pranami DA, Ruvishika SJ, Wei Z, Kevin H et al (2020) Rhizopus arrhizus (syn. R. oryzae) causing sunflower head rot in Hebei Province, China. Plant Dis 104(10):2732-2732. DOI: 10.1094/PDIS-10-19-2228-PDN EDN: PFZADE ▼ Контекст
102. Prathuangwong S, Kao SW, Sommartya T, Sinchaisri P (1991) Role of four Alternaria spp. causing leaf and stem blight of sunflower in Thailand and their chemical controls. The Kasetsart J 25: 112-124. ▼ Контекст
103. Punja ZK (1985) The biology, ecology, and control of Sclerotium rolfsii. Ann Rev Phytopathol 23:97-127. ▼ Контекст
104. Rajput NA, Atiq M, Lodhi AM, Syed RN et al (2024) First report of Pythium aphanidermatum causing stem and root rot disease on sesame (Sesamum indicum L.) in Punjab, Pakistan. J Plant Pathol:1-2. DOI: 10.1007/s42161-024-01760-7 ▼ Контекст
105. Rashid KY (2016) Phialophora yellows. In: Harveson RM, Markell SG, Block CC, and Gulya TJ (eds) Compendium of sunflower diseases and pests. St. Paul: The American Phytopathological Society. 56-57. ▼ Контекст
106. Rogers CE, Thompson TE, Zimmer DE (1978) Rhizopus head rot of sunflower: etiology and severity in the Southern Plains. Plant Dis Rep 62: 769-771. ▼ Контекст
107. Rost C, Thines M (2012) A new species of Pustula (Oomycetes, Albuginales) is the causal agent of sunflower white rust). Mycol Prog 11: 351-359. DOI: 10.1007/s11557-011-0748-z EDN: HGWGXC ▼ Контекст
108. Sendall BC, Kong GA, Goulter KC, Aitken EAB et al (2006) Diversity in the sunflower: Puccinia helianthi pathosystem in Australia. Australas Plant Pathol 35 (6):657-670. DOI: 10.1071/AP06071 EDN: BZPBIS ▼ Контекст
109. Siddique MM, Khokhar LK (1985) Occurence of sunflower collar rot diseases caused by Sclerotium rolfsii in Pakistan. Helia 1:10-14. ▼ Контекст
110. Spring O (2019) Spreading and global pathogenic diversity of sunflower downy mildew - Review. Plant Prot Sci 55(3): 149-158. DOI: 10.17221/32/2019-PPS ▼ Контекст
111. Talemarada S, Mahesh M, Aswathanarayana DS (2017) Survey for the Severity of Powdery Mildew in Sunflower in Major Districts of North Eastern Karnataka, India. Int J Curr Microbiol App Sci 6(12):1710-1713. DOI: 10.20546/ijcmas.2017.612.193 ▼ Контекст
112. Thines M, Zipper R, Spring O (2006) First report of Pustula tragopogonis, the cause of white blister rust on cultivated sunflower in southern Germany. Plant Dis 90 (1):110. DOI: 10.1094/PD-90-0110C ▼ Контекст
113. Thompson SM, Young AJ, Neate SM, Aitken EAB (2011) Stem cankers on sunflower (Helianthus anuus) in Australia reveal a complex of pathogenic Diaporthe (Phomopsis) species. Persoonia 27:80-89. DOI: 10.3767/003158511X617110 ▼ Контекст
114. Trigiano RN, Boggess SL, Odoi M, Hadziabdic D et al (2022) First Report of Coleosporium helianthi infecting Helianthus verticillatus (whorled sunflower) in the United States. Plant Dis 106 (7):1773-2006. DOI: 10.1094/PDIS-11-21-2496-PDN EDN: VYOJNZ ▼ Контекст
115. Van Wyk PS, Jones BL, Viljoen A, Rong IH (1995) Early lodging, a novel manifestation of Albugo tragopogonis infection on sunflower in South Africa. Helia 18: 83-90. ▼ Контекст
116. Viljoen A, van Wyk PS, Jooste WJ (1999) Occurrence of the white rust pathogen, Albugo tragopogonis, on sunflower heads. Plant Dis 83(12): 1174. ▼ Контекст
117. Virányi F (2018) CABI invasive species compendium. Datasheet Plasmopara halstedii (downy mildew of sunflower). Available at https://www.cabi.org/isc/datasheet/41911 (accessed Jan 20, 2019). ▼ Контекст
118. Wang T, Zhao J, Sun P, Wu XH (2014) Characterization of Alternaria species associated with leaf blight of sunflower in China. Eur J Plant Pathol 140 (2):301-315. DOI: 10.1007/s10658-014-0464-z EDN: IEETLR ▼ Контекст
119. Weiland J, Santamaria L (2025) Greenhouse plants, Ornamental-Pythium seed rot, damping-off, and root rot. In: Pscheidt JW, Ocamb CM (eds). Pacific Northwest Plant Disease Management Handbook. Oregon State University. https://pnwhandbooks.org/node/2829. ▼ Контекст
120. Woudenberg JHC, Truter M, Groenewald JZ, Crous PW (2014) Large-spored Alternaria pathogens in section Porri disentangled. Stud Mycol 79:1-47. DOI: 10.1016/j.simyco.2014.07.003 EDN: UQVMPF ▼ Контекст
121. Wu YG, Fu G, Kang DX, Li WJ et al (2016) First Report of Phytophthora drechsleri causing black stem rot and crown decay of sunflower in China. Plant Dis 100(3):654. DOI: 10.1094/PDIS-09-15-1089-PDN
122. Yang J, Wang Y, Shi S, Li H et al (2024) The isolation and identification of a new pathogen causing sunflower disk rot in China. Agronomy 14: 1486. DOI: 10.3390/agronomy14071486 EDN: RHXFFU ▼ Контекст
123. Yang SM (1979) Rhizopus head rot of cultivated sunflower in Texas. Plant Dis Rep. 63 (10):833-835. ▼ Контекст
124. Zimmer DE, Hoes JA (1978) Diseases. In: Carter JF (ed) Sunflower Science and Technology (Agronomy Monograph 19). Madison: WI. 225-262. DOI: 10.2134/agronmonogr19.c7 ▼ Контекст
125. Zhang Y, Yu Y, Jia R, Liu L et al (2021) Occurrence of Alternaria leaf blight of sunflower caused by two closely related species Alternaria solani and A. tomatophila in Inner Mongolia. Oil Crop Sci 6(2):74-80.
Выпуск
Другие статьи выпуска
В работе проведена оценка влияния микоризации на экспрессию генов, относящихся к группам генной онтологии GO:0050832 (защитный ответ на грибную инфекцию) и GO:0042742 (защитный ответ на бактериальную инфекцию) при развитии эффективного симбиоза в модельной системе “Medicago lupulina + Rhizophagus irregularis”. Оценка экспрессии генов проведена методом массового анализа концов кДНК (MACE-Seq). В вегетационных условиях при низком уровне доступного для питания растений фосфора в субстрате в листьях M. lupulina выявлена негативная регуляция 44 и 42 генов групп защитного ответа на грибную и бактериальную инфекции, соответственно, в фазу развития второго листа и фазу цветения. Показаны существенно более низкие уровни экспрессии генов (ортологи Medtr1g021100, Medtr1g021110), кодирующих белки устойчивости к мучнистой росе RPW8, при микоризации грибом R. irregularis как в вегетативную, так и в репродуктивную фазы развития растения. Обсуждается роль гриба арбускулярной микоризы в формировании неспецифической реакции на патогенные микроорганизмы при развитии эффективного симбиоза.
В работе представлены результаты выпусков хищных антокорид Orius laevigatus и O. strigicollis против западного цветочного трипса на сенполиях в оранжерее. В зимне-весенний период численность трипсов сократилась до 0.1 трипсов на цветок а биологическая эффективность составила 94 % и 96 % при применении O. laevigatus и O. strigicollis, соответственно. В летний период численность трипсов упала до 0.1 и 0.04 трипсов на цветок, биологическая эффективность составила 95 % и 98 %, соответственно. На эффективность потребления трипсов клопами повлиял сезон выпуска: клопы больше хищничали в летний период, когда температура была выше, что подтверждается данными других исследователей
Ясеневая изумрудная узкотелая златка Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) – опасный инвазионный вредитель ясеней Fraxinus spp. По результатам маршрутного обследования, проведенного в июле 2025 г., приводится первая находка A. planipennis в Республике Карачаево-Черкесия, выявлены новые очаги в Ставропольском крае (в регионе Минеральных Вод), уточнено местонахождение очагов в Краснодарском крае, впервые златка зарегистрирована в городских насаждениях г. Краснодар. В Кабардино-Балкарии и в Адыгее повреждения A. planipennis не обнаружены. Из общего числа выявленных очагов 70 % приходилось на полезащитные и придорожные полосы, два очага были отмечены в скверах и один – в насаждении ботанического сада. Результаты исследования важны для прогнозирования дальнейшего распространения вредителя на Северном Кавказе.
В статье сообщается о первой находке кипарисовой плодожорки (Pammene blockiana) в России. Самцы данного вида были отловлены в Сочи в мае 2025 года при помощи клеевых ловушек с синтетическим половым феромоном карантинного вредителя – восточной плодожорки Grapholita molesta. Всего было отловлено 48 самцов P. blockiana в семь ловушек, установленных в садах и декоративных насаждениях г. Сочи. Вид был идентифицирован по морфологическим признакам (рисунку передних крыльев и строению гениталий), а также при помощи ДНК-баркодинга. Образцы из Сочи показали низкую генетическую изменчивость (0.2 % среди трёх самцов из трёх точек) и сформировали один кластер с образцами вида из Греции с максимальной генетической дистанцией 1.4 %. По фрагменту гена COI митохондриальной ДНК к P. blockiana наиболее близка плодожорка Pammene oxycedrana с минимальной генетической дистанцией 5.4 %, за которой следует Pammene juniperana (7.1 %). Регулярные отловы в феромонные ловушки позволяют предположить, что кипарисовая плодожорка обитает в Сочи и встречается там отнюдь не при низкой численности. Поскольку ее гусеницы повреждают шишки кипариса и можжевельника, вид может представлять потенциальную угрозу для кипарисовых в искусственных насаждениях и в природе вдоль побережья Черного моря. В статье представлены новые данные о распространении вида, приведены фотографии бабочки и гениталий самца P. blockiana, а также фотографии бабочек близких видов. Указаны диагностические признаки кипарисовой плодожорки, позволяющие отличить ее от близкородственных видов, связанных с кипарисовыми в Европе. Обсуждаются возможные экологические последствия и риск дальнейшего распространения P. blockiana.
В работе оценена эффективность энтомопатогенного гриба вида Akanthomyces muscarius против оранжерейной белокрылки Trialeurodes vaporariorum и возбудителя серой гнили Botrytis cinerea. Установлено, что при предварительной обработке листьев томатов конидиями двух изученных штаммов вида A. muscarius, площади поражения серой гнилью были меньше. Наибольшее сдерживающее воздействие на развитие серой гнили отмечено для штамма Vl 61. Этот же штамм при обработке целых растений томатов наиболее эффективно подавлял развитие заболевания на 4 сутки, и в дальнейшем растения развивались на уровне контрольных. При заражении листьев томата B. cinerea, предварительно заселенных T. vaporariorum, смертность белокрылки от обработки спорами Vl 61 составила 69 % на 4-е сутки, что на 50 % выше, чем в отсутствие B. cinerea. Эффективность A. muscarius в отношении фитопатогена в присутствии личинок белокрылки была существенно ниже, чем на незаселенных белокрылкой растениях. С помощью флуоресцентной микроскопии доказаны гиперпаразитические свойства A. muscarius в отношении B. cinerea и установлено, что при совместном росте штамма Vl 61* (меченого флуоресцентной меткой) и возбудителя серой гнили на агаризованной среде гифы ЭПГ обвивают гифы B. cinerea, и проникают внутрь, разрастаются и выходят наружу, разрушая клеточные стенки фитопатогена. Полученные результаты позволяют говорить о перспективности применения штамма Vl 61 вида A. muscarius для защиты томатов от B. cinerea и T. vaporariorum.
Условно-патогенная бактерия Erwinia rhapontici вызывает розовый бактериоз зерна пшеницы и ржи, существенно снижая качество зерновой продукции, что ограничивает экспорт зерна из Российской Федерации. Выделение чистой культуры бактерии необходимо для эффективной диагностики патогена с целью предотвращения его распространения. Присутствие E. rhapontici в зараженном растении в составе бактериального комплекса требует использования селективных факторов, таких как антибиотики. Изолируемый объект должен быть устойчивым к антибиотикам, используемым в питательной среде. В настоящем исследовании проведено определение устойчивости штаммов VNIIKR-B-0065 из Sorbus aucuparia и VNIIKR-B-0102 из Triticum durum к различным антибиотикам с применением диско-диффузионного метода и метода жидких сред. При использовании дисков с антибиотиками, наименьший уровень ингибирования роста целевой бактерии отмечен в вариантах с тилозином и ампициллином, что делает их перспективными для добавления в состав селективной питательной среды. Энрофлоксацин, цефтазидим, амикацин, ципрофлоксацин, меропенем, цефоперазон и тетрациклин статистически достоверно ингибировали рост E. rhapontici. Меропенем и энрофлоксацин подавляли рост патогена сильнее всего. В жидкой среде в присутствии 2,3,5-трифенилтетразолия хлористого как стандартного индикатора окислительно-восстановительной реакции, были определены перспективные для использования в составе селективной питательной среды антибиотики и установлены их оптимальные концентрации, не влияющие на рост целевой бактерии. Ими являются ампициллин 0.1 мг/л, бацитрацин 100 мг/л, ванкомицин 0.1 мг/л, касугамицин 25 мг/л, новобиоцин 2.5 мг/л, пенициллин G 3 мг/л, тетрациклин 50 мг/л и тилозин 50 мг/л. Отмечено количественное различие в устойчивости к антибиотикам между двумя штаммами E. rhapontici, что может быть связано с их специфическими генетическими свойствами. Полученные результаты заложили основу для исследования большого числа изолятов E. rhapontici, для разработки окончательного состава селективной среды.
Симптом «черный зародыш», распространенное изменение цвета зерна пшеницы и ячменя, отмечается по всему миру в большинстве регионов выращивания данных культур. Существуют жёсткие стандарты по содержанию зерна с черным зародышем в партиях продовольственной пшеницы как в России, так и за рубежом. Механизмы, участвующие в появлении темного пигмента, до сих пор окончательно не выяснены. В настоящем исследовании был проведен анализ средних образцов товарных партий озимой пшеницы из Центрального федерального округа урожая 2024 г., где доля визуально выявленных зерен с черным зародышем составила от 4.3 до 27.0 %. Согласно полученным результатам, процент инфицирования грибами, таксономический состав микобиоты и содержание ДНК двух доминирующих групп грибов Alternaria и Fusarium были высоко сходными во фракциях внешне здорового зерна и зерна с черным зародышем. По нашему мнению, данный симптом обусловлен абиотическими факторами среды, вызывающими физиологическое потемнение тканей зерен, и с большой долей уверенности может быть отнесен к заболеваниям пшеницы, вредоносность которых не доказана.
Головнёвые грибы рода Tilletia – распространенные и вредоносные патогены пшеницы во всем мире. В последнее десятилетие, в связи с расширением зон органического земледелия, отмечается нарастание их значимости, что предопределяет необходимость усиления внимания к этой проблеме. Представлен обзор литературных данных по грибам рода Tilletia (T. caries, T. laevis, T. controversa) – возбудителям твердой и карликовой головни пшеницы. Проанализированы биологические и экологические особенности патогенов, морфология спор, симптоматика болезней, исторические аспекты их изучения в России и за рубежом. Обсуждаются фитопатологические и молекулярные методы диагностики возбудителей головневых заболеваний рода Tilletia. Показаны ограничения фитопатологической диагностики, связанные с морфологическим сходством телиоспор возбудителей твердой и карликовой головни. Проведен критический анализ развития молекулярных подходов к идентификации – от биохимических методов и анализа консервативных генетических локусов (ITS, IGS и пр.) до методов случайного геномного профилирования (RAPD, ISSR и пр.), MALDI-TOF масс-спектрометрии, изотерической амплификации (LAMP) и высокопроизводительного секвенирования (NGS). Особое внимание уделено проблеме недостаточной специфичности и воспроизводимости многих молекулярных методов, включая SCAR-маркеры. Анализ литературных данных дополнен оригинальными результатами по проращиванию спор T. caries и T. controversa и апробации SCAR-маркера для идентификации возбудителя карликовой головни пшеницы.
Издательство
- Издательство
- ВИЗР
- Регион
- Россия, Санкт-Петербург
- Почтовый адрес
- Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 3
- Юр. адрес
- Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 3
- ФИО
- Ганнибал Филипп Борисович (Директор)
- E-mail адрес
- info@vizr.spb.ru
- Контактный телефон
- +7 (812) 4705110
- Сайт
- http:/vizrspb.ru