В кратком обзоре рассматриваются свободнорадикальные реакции растительных организмов и современный уровень изученности их антиоксидантных свойств. Приведены общие сведения об антиоксидантной активности картофеля Solanum tuberosum L. Как соединения, которые могут помогать растениям в физиологии развития, а также переживать окислительный стресс, рассмотрены гуминовые вещества.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Науки о Земле
АФК возникают при неполном восстановлении молекулярного кислорода: супероксидрадикала (О2 ∙¯), пероксида водорода (Н2O2), гидроксил радикала (OH∙), синглетного кислорода (1О2). В норме эти реактивные соединения образуются в растениях в хлоропластах [1], митохондриях [2], пероксисомах [3]. Эти вещества содержат один или несколько неспаренных электронов (свободных радикалов) из-за чего они обладают очень высокой реакционной активностью и способны к различным окислительным воздействиям, что приводит к негативным последствиям для организма.
Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.
Список литературы
1. Asada K. Production and scavenging of reactive oxygen species in chloroplasts and their functions // Plant Physiology. - 2006. - V. 141, Is. 2. - P. 391-396. EDN: MJQVBF
2. Ohta S. Molecular hydrogen is a novel antioxidant to effi ciently reduce oxidative stress with potential for the improvement of mitochondrial diseases // Biochim. Biophys. Acta. - 2012. - V. 1820. - P. 586-594.
3. Bleier L., Dröse S. Superoxide generation by complex III: from mechanistic rationales to functional consequences // Biochim Biophys Acta. -2013; 1827(11-12)1320-31.
4. Полесская О.Г. Растительная клетка и активные формы кислорода. - М.: Изд-во КДУ, 2007. - 140 с. EDN: QKPSZP
5. Физиология растений: учебник для студ. вузов [под ред. Алёхин Н.Д., Балконин Ю.В., Гавриленко В.Ф.] - М.: Академия, 2005. - 640 с.
6. Глыбочко П.В., Попков В. М., Чеснокова Н. П., Ледванов М. Ю. Активация липопероксидации как ведущий патогенетический фактор развития типовых патологических процессов и заболеваний различной этиологии. Монография. - Академия Естествознания, 2012. - 275 c. EDN: PQMCDU
7. Triantaphylidès C., Havaux M. Singlet oxygen in plants: production, detoxifi cation and signaling // Trends in plant science. - 2009. - V. 14(4). - P. 219-228. EDN: MMDFIJ
8. Larson R. A. The antioxidants of higher plants. - Phytochemistry. - 1988 - V. 27(4). - P. 969-978.
9. Gill S.S., Tuteja N. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants // Plant Physiol. Biochem. - 2010. - V. 48, № 12. - P. 909-930. EDN: OLSVGT
10. Смирнова О.В., Ефимова И.В., Хилько С.Л., Опейда И.А., Рыбаченко В.И., Антиоксидантные свойства гуминовых кислот в процессах радикально-цепного окисления // Наносистеми, наноматериiали, нанотехнологii. - 2010. - Т. 8, № 4. - С. 835-841.
11. Прадедова Е.В., Ишеева О.Д., Саляев Р.К Классификация системы антиоксидантной защиты как основа рациональной организации экспериментального исследования окислительного стресса у растений // Физиология растений. - 2011. - Т. 58. - № 2. - С. 177-185. EDN: NDOTMD
12. Шарова Е. И. Антиоксиданты растений. - СПб.: С-Петерб.гос. ун-т, 2016. - 140 с. EDN: VZMHSB
13. Liang X., Zhang L., Natarajan S.K., Becker D.F. Proline mechanisms of stress survival // Antioxid. Redox Signal. - 2013. - V. 19, № 9. - P. 998-1011. EDN: YFACBR
14. Синькевич М.С., Дерябин А.Н., Трунова Т.И. Особенности окислительного стресса у растений картофеля с измененным углеводным метаболизмом // Физиология растений. - 2009. - Т. 56. - № 2. - С. 18-192. EDN: JWIRBH
15. Antolovich S. D., Antolovich B. F. The eff ects of microstructure, deformation mode and environment on fatigue. Fracture of Nano and Engineering Materials and Structures / Proceedings of the 16th European Conference of Fracture. - Alexandroupolis, Greece, July 3-7, 2006. - P. 1245-1246.
16. Davey M. W., Montagu M. V., Inze D., Sanmartin M., Kanellis A., Smirnoff N., Fletcher J. Plant L-ascorbic acid: chemistry, function, metabolism, bioavailability and eff ects of processing // Journal of the Science of Food and Agriculture. - 2000. - V. 80(7). - P. 825-860. EDN: XRSUEQ
17. Pignocchi C., Foyer C. H. Apoplastic ascorbate metabolism and its role in the regulation of cell signaling // Current opinion in plant biology. - 2003. - V. 6(4). - P. 379-389.
18. Delgado-Vargas F., Jiménez A. R., Paredes-López O. Natural pigments: carotenoids, anthocyanins, and betalains - characteristics, biosynthesis, processing, and stability // Critical reviews in food science and nutrition. - 2000. - V. 40(3). - P. 173-289.
19. Boon C. S., McClements D. J., Weiss J., Decker E. A. Factors infl uencing the chemical stability of carotenoids in foods // Critical reviews in food science and nutrition. - 2010. - V. 50(6) - P. 515-532. EDN: MYLRMD
20. Jiang Q. Natural forms of vitamin E: metabolism, antioxidant, and anti-infl ammatory activities and their role in disease prevention and therapy // Free Radical Biology and Medicine. - 2014. - V. 72. - P. 76-90.
21. James A. M., Smith R. A., Murphy M. P. Antioxidant and prooxidant properties of mitochondrial Coenzyme Q // Archives of biochemistry and biophysics. - 2004. - V. 423(1). - P. 47-56.
22. Pravst I., Žmitek K., Žmitek J. Coenzyme Q10 contents in foods and fortifi cation strategies // Critical reviews in food science and nutrition. - 2010. - V. 50(4). - P. 269-280.
23. Damon M., Zhang N. Z., Haytowitz D. B., Booth S. L. Phylloquinone (vitamin K1) content of vegetables // Journal of Food Composition and Analysis. - 2005. V. 18(8). - P. 751-758.
24. Bela K., Horváth E., Gallé Á., Szabados L., Tari I., Csiszár J. Plant glutathione peroxidases: emerging role of the antioxidant enzymes in plant development and stress responses // Journal of Plant Physiology. - 2015. - V. 176. - P. 192-201. EDN: UOKUYV
25. Gill S. S., Anjum N. A., Hasanuzzaman M., Gill R., Trivedi D. K., Ahmad I., Tuteja N. Glutathione and glutathione reductase: a boon in disguise for plant abiotic stress defense operations. // Plant Physiology and Biochemistry. - 2013. - V. 70. - P. 204-212.
26. Manach C., Scalbert A., Morand C., Remesy C., Jimenez L. Polyphenols: Food sources and bioavailability // The American Journal of Clinical Nutrition. - 2004. - V. 79. - P. 727-747.
27. Bravo L. Polyphenols: Chemistry, dietary sources, metabolism and nutritional signifi cance // Nutrition Reviews. - 1998. - V. 56. - P. 317-333. EDN: XZTVAW
28. Beckman C. Phenolic-storing cells: Keys to programmed cell death and periderm formation in wilt disease resistance and in general defence responses in plants? // Physiol. Mol. Plant Pathol. - 2000. - V. 57. - P. 101-110.
29. Parr A., Bolwell G. Phenols in the plant and in man. The potential for possible nutritional enhancement of the diet by modifying the phenols content or profi le // J. Sci. Food Agric. - 2000. - V. 80. - P. 985-1012.
30. Valcarcel J., Reilly K., Gaff ney M., O’Brien N. Antioxidant activity, total phenolic and total fl avonoid content in sixty varieties of potato (Solanum tuberosum L.) grown in Ireland // Potato Res. - 2015. - V. 58. - P. 221-244.
31. Ignat I., Volf I., Popa V. A critical review of methods for characterisation of polyphenolic compounds in fruits and vegetables // Food Chem. - 2011 - V. 126. - P. 1821- 1835.
32. Lemos M., Aliyu M., Hungerford G. Infl uence of cooking on the levels of bioactive compounds in purple majesty potato observed via chemical and spectroscopic means // Food Chem. - 2015. - V. 173. - P. 462-467.
33. Brown C. R., Culley D., Yang C., Durst R., Wrolstad R. Variation of anthocyanin and carotenoid contents and associated antioxidant values in potato breeding lines // Journal of the American Society for Horticultural Science. - 2005. - V. 130. - P. 174-180.
34. Mattila P., Hellstrom J. Phenolic acids in potatoes, vegetables, and some of their products // Journal of Food Composition and Analysis. - 2007. - V. 20. - P. 152-160.
35. Brown C.R. Antioxidants in potato // Am. J. Pot. Res. - 2005. - V. 62. - P. 163-172. EDN: WKFZIK
36. Al-Saikhan M. S., Howard L. R., Miller J. C. Antioxidant activity and total phenolics in diff erent genotypes of potato (Solanum tuberosum L.) // Journal of Food Science. - 1995. - V. 60. - P. 341-343.
37. Chun O. K., Kim D. O., Smith N., Schroeder D., Han J. T., Lee, C. Y. Daily consumption of phenolics and total antioxidant capacity from fruit and vegetables in the American diet // Journal of the science of food and agriculture. -2005. - V. 85. - P. 1715-1724.
38. Lewis C. E., Walker J. R. L., Lancaster J. E. Changes in anthocyanin, fl avonoid and phenolic acid concentrations during development and storage of coloured potato (Solanum tuberosum L.) tubers // Journal of the Science of Food and Agriculture. - 1999. - V. 79. - P. 311-316.
39. Navarre D. A., Shakya R., Holden M., Kumar S. The eff ect of diff erent cooking methods on phenolics and vitamin C in developmentally young potato tubers // American Journal of Potato Research. - 2010. - V. 87. - P. 350-359. EDN: JPQGAJ
40. Giovanni A., Azzarello L., Pollastri S., Tattini M. Flavonoids as antioxidants in plants: Location and functional signifi cance // Plant Science. - 2012. - V. 196 - P. 67- 76. EDN: RKIBRL
41. Lewis C. E., Walker J. R. L., Lancaster J. E., Sutton K. H. Determination of anthocyanins, fl avonoids and phenolic acids in potatoes. I: Coloured cultivars of Solanum tuberosum L. // Journal of the Science of Food and Agriculture. - 1998. - V. 77. - P. 45-57.
42. Brown C.R. Breeding for phytonutrient enhancement of potato // American Journal of Potato Research. - 2008. - V. 85. - P. 298-307. EDN: UDVXBM
43. Поливанова О.Б., Гинс Е.М. Антиоксидантная активность пигментированного картофеля (Solanum tuberosum L.), содержание антоцианов, их биосинтез и физиологическая роль // Овощи России -2019 - V. 6. - C. 84-90. DOI: 10.18619/2072-9146-2019-6-84-90 EDN: ITVJJO
44. Jansen G., Flamme W. Colored potatoes (Solanum tuberosum L.) - anthocyanin content and tuber quality // Genetic Resources and Crop Evolution. - 2006. - V. 53. - P. 1321-1331. EDN: UFXSSH
45. Andre C. M., Oufi r M., Guignard C., Hoff mann L., Hausman J. F., Evers D., Larondelle Y. Antioxidant profi ling of native Andean potato tubers (Solanum tuberosum L.) reveals cultivars with high levels of β-carotene, α-tocopherol, chlorogenic acid, and petanin // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2007. - V. 55. - P. 10839-10849.
46. Reyes L. F., Miller J. C. Jr., Cisneros-Zevallos L. Environmental conditions infl uence the content and yield of anthocyanins and total phenolics in purple- and red-fl esh potatoes during tuber development. // American Journal of Potato Research. - 2004. - V. 81. - P. 187-193. EDN: FVJLTR
47. Chao Pi-Yu, Huang Wei-Yu, Hu Shene-Pin et al. Indigenous purple vegetable extracts protect against hydrogen peroxide-induced DNA damage in human lymphocytes // Food and Nutrition Sciences. - 2013. - V. 4, № 08A. - P. 561-566. DOI: 10.4236/fns.2013.48A008
48. Marinova G., Batchvarov V. Evaluation of the methods for determination of the free radical scavenging activity by DPPH // Bulcarian J. of Agricultural Science. - 2011. - V. 17, №1. - P. 11-24.
49. Sulaiman M., Tijani H., Abubakar B., Haruna S., Hindatu Y., Mohammed J., Idris A. An overview of natural plant antioxidants: analysis and evaluation // Advances in Biochemistry. - 2013. - V. 1, №4. - P. 64-72.
50. Lukaszewicz M., Matysiak-Kata I., Skala J., Fecka I., Cisowski W., Szopa J. Antioxidant capacity manipulation in transgenic potato tuber by changes in phenolic compounds content // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2004. - V. 52. - P. 1526-1533.
51. Goyer A., Navarre D. A. Determination of folate concentrations in diverse potato germplasm using a trienzyme extraction and a microbiological assay // J. of Agricultural and Food Chemistry. - 2007. - V. 55. - P. 3523-3528.
52. Kotikova Z., Hejtmankova A., Lachman J., Hamouz K., Trnkova E., Dvorak P. Eff ect of selected factors on total carotenoid content in potato tubers (Solanum tuberosum L.) // Plant Soil Environment. -2007. - V. 53. - P. 355-360.
53. Konings E. J., Roomans H. H., Dorant E., Goldbohm R. A., Saris W. H., van den Brandt P. A. Folate intake of the Dutch population according to newly established liquid chromatography data for foods // The American Journal of Clinical Nutrition. - 2001. - V. 73. - P. 765-776.
54. Navarre D. A., Goyer A., Shakya R. Nutritional value of potatoes. Vitamin, phytonutrient and mineral content / J. Singh, & L. Kaur (Eds.) Advances in potato chemistry and technology. - 2009. - P. 395-424.
55. DellaPenna D., Pogson B. J. Vitamin synthesis in plants: Tocopherols and carotenoids // Annual Review of Plant Biology. - 2006. - V. 57. - P. 711-738. EDN: MKJRSD
56. Trevisan S., Francioso O., Quaggiotti S., Nardi S. Humic substances biological activity at the plant-soil interface: from environmental aspects to molecular factors // Plant Signaling & Behavior. - 2010. - V. 5, № 6. - P. 635-643.
57. Berbara R. L., García A. C. Humic substances and plant defense metabolism / Physiological mechanisms and adaptation strategies in plants under changing environment: V. 1. - 2013. - P. 297-319.
58. Nardi S., Pizzeghello D. Physiological eff ects of humic substances on higher plants // Soil Biol. Biochem. - 2002. - № 34. - P. 1527-1536. EDN: BDAFAP
59. Biophysico-chemical processes involving natural nonliving organic matter in environmental systems [ed. Nardi S., Carletti P., Pizzeghello D., Muscolo A.] Рart 8. Biological activities of humic substances. - 2009. - P. 305-339.
60. Canellas L. P., Spaccini R., Piccolo A., Dobbss L. B., Okorokova-Façanha A. L., de Araújo Santos G., Façanha A. R. Relationships between chemical characteristics and root growth promotion of humic acids isolated from Brazilian oxisols // Soil Science. - 2009. - V. 174, №11. - P. 611-620. 10.1097/ SS.0b013e3181bf1e03. DOI: 10.1097/SS.0b013e3181bf1e03
61. Куликова Н.А. Защитное действие гуминовых веществ в водной и почвенной средах в условиях абиотических стрессов: Дис.... д-ра биол. наук. - М., 2008. - 302 с. EDN: QEGFUN
62. Verrillo M., Salzano M, Savy D., Meo V. D., Valentini M., Cozzolino V., Piccolo A. Antibacterial and antioxidant properties of humic substances from composted agricultural biomasses // Chemical and Biological Technologies in Agriculture - 2022. - V. 9. - № 28. DOI: 10.1186/s40538-022-00291-6 EDN: NCMMDP
Выпуск
Другие статьи выпуска
В условиях многолетнего полевого опыта исследовали эффективность методов ремедиации агродерново-подзолистой почвы, загрязненной нефтью. Мероприятия по восстановлению и улучшению качества почвы включали внесение минеральных удобрений и извести, посев трав, применение различных биопрепаратов. Сравнительную оценку методов ремедиации проводили с использованием комплекса диагностических показателей. Такие показатели как надземная биомасса растений, скорость минерализации нефтепродуктов, ферментативная активность почвы и базальное дыхание проявили высокую чувствительность к загрязнению и мероприятиям по восстановлению почвы, что позволило выявить разную эффективность использованных методов ремедиации. Наибольшая эффективность была достигнута при комплексном использовании агрохимических и биологических методов при условии корректно выбранного биопрепарата-нефтедеструктора.
Исследовано влияние гуминовых веществ (ГВ) на способность базидиомицетов разлагать ароматические нефтяные углеводороды в нестерильной почве и торфе при низкой температуре. Исследованные штаммы грибов включали в себя первичные (Pleurotus ostreatus, Trametes hirsuta) и вторичный (Steccherinum murashkinskyi) ксилотрофы. После 90 дней инкубирования при 4 °С снижение содержания ароматических нефтяных углеводородов в почве (на 1,1 г/кг) наблюдали только при использовании штамма вторичного ксилотрофа S. murashkinskyi. В торфе окислять нефть были способны все штаммы грибов, и количество разложенных ароматических нефтяных углеводородов лежало в диапазоне 0,7-1,5 г/кг. Впервые показано, что влияние ГВ на скорость деградации ароматических углеводородов зависело как от грибного штамма, так и от субстрата. В случае P. ostreatus ГВ интенсифицировали деградацию ароматических углеводородов нефти как в почве, так и в торфе. Для T. hirsuta положительное действие ГВ было отмечено только на торфе; в случае S. murashkinskyi ГВ либо не влияли скорость разложения ароматических фракций нефти (торф), либо замедляли ее (почва). Анализ электронных спектров поглощения остаточной фракции нефти показал, что усиление скорости окисления в присутствии ГВ может быть обусловлено повышением деградации как моно- и бициклических ароматических соединений (P. ostreatus), так и трициклических (T. hirsuta). Отрицательное действие ГВ на деградацию ароматических фракций нефти было отмечено только для вторичного ксилотрофа S. murashkinskiy при разложении фенантрена.
Цель работы заключалась в поиске солеустойчивой культуры высших растений для измерения токсичности водных вытяжек из твердых материалов (почвы, отходы и др.), а также для вод на фоне среднего уровня солености. В экспериментах с модельными водно-солевыми растворами исследовали пять видов культурных растений (тест-культур) из классов двудольных (горчица белая, люцерна изменчивая) и однодольных (житняк гребневидный, ячмень яровой и овес посевной) с помощью планшетной системы «Фитоскан». На основании сравнения чувствительности ростовых тест-откликов (длина корней, длина ростков и энергия прорастания) к повышенному солесодержанию (1-6 г/дм3) сделан вывод о наибольшей пригодности горчицы белой (Sinapis alba L.) для измерений токсичности среднеминерализованных водных сред, отходов и водных экстрактов засоленных почв. Результаты исследования составили основу новой методики измерения токсичности по изменению длины корней S. alba.
Новый синтетический N-гликозиламин - N6 -рамнозиладенин изучен в качестве потенциального биологически активного вещества в отношении процессов прорастания семян пшеницы (Triticum aestivum L). Результаты вегетационных экспериментов демонстрируют ингибирование роста корней тестируемых растений при увеличении концентрации рамнозиладенина. Характер и динамику изменения первичных метаболитов тест-растений исследовали методом колебательной спектроскопии посредством изучения инфракрасных спектров проростков. Анализ профилей спектральных полос позволяет обнаружить метаболические изменения, вызванные влиянием рострегулятора. Изменения положения и интенсивности комбинации низкочастотных спектральных полос, относимых к колебаниям сахаридных фрагментов, по мере увеличения концентрации рамнозиладенина указывают на снижение углеводного пула, иллюстрируя ингибирование синтеза полисахаридов. Аналогичное изменение концентрации рамнозиладенина приводит к снижению содержания белков, предположительно, вследствие повышения активности протеаз, интенсифицирующих гидролитическое расщепление протеинов растений до свободных аминокислот. Анализ высокочастотной области спектров показывает переход молекул липидов в скошенные конформации при увеличении содержания препарата, что может быть связано с ростом разупорядоченности мембран. Полученные результаты исследования планируется использовать при дальнейшей разработке методик направленной модификации производных аденина.
В лабораторно-вегетационном опыте продолжительностью два вегетационных периода, заложенном на сильнокислой дерново-подзолистой легкосуглинистой почве, проведено сравнительное изучение мелиоративных свойств и удобрительной ценности мелиорантов различной химической природы, внесенных в дозе 0,7 гидролитической кислотности. Объектами изучения являлись мелиоранты карбонатной природы: доломитизированная известняковая мука (ДИМ), доломитовая мука (ДМ), конверсионный мел (КМ), тонкоизмельченный отсев щебня (ОЩ); мелиоранты силикатной природы: доменный шлак (ДШ), а также мелиоранты гидроксидной природы - гидроксид магния (брусит) с различным содержанием и соотношением MgO: CaO. Попутно устанавливали удобрительную ценность APAVIVA - комплексного минерального удобрения, производимого ПАО «Фосфорит». Внесение в почву мелиорантов карбонатной природы КМ, ОЩ, ДИМ, ДМ способствовало росту величины рН в первый вегетационный период. Эффекты от их использования мало отличались друг от друга (рНKCl колебался от 4,39 до 4,48 ед.). Аналогичным образом на величину рНKCl повлиял ДШ (рНKCl 4,3). Внесение APAVIVA в чистом виде и в сочетании с бруситом мелиоративного эффекта не оказало. После уборки растений гороха уровень почвенной кислотности во всех вариантах опыта вернулся к исходным значениям до закладки опыта. Колебания рНKCl составили от 3,32 до 4,02 ед. По удобрительной ценности все изученные мелиоранты за два вегетационных периода изучения можно выстроить по убыванию в следующий ряд: КМ > ДМ > ОЩ > ДИМ > ДШ > бруситы (кат. А, Б, С).
Пероксид водорода и другие активные формы кислорода (АФК) в ходе эволюции принимали участие в регуляции роста, развития и дифференциации растений. В работе предложено оборудование, основанное на плазменном разряде в условиях кавитации, для генерации в воде АФК, в первую очередь, пероксида водорода. Было обнаружено, что генерация пероксида водорода в обработанной воде зависит от наличия в воде примесей. Авторами работы проведено исследование влияния различных режимов обработки воды в плазменном реакторе на энергию прорастания семян, развитие корневой системы и проростков редиса. Каждому режиму соответствовали различные концентрации пероксида водорода, измеренные по методике перманганатного титрования. Были определены наиболее эффективные режимы обработки воды для каждого этапа роста Raphanus sativus сорта Вюрцбургский 59. В результате работы было выявлено, что содержание пероксида водорода не является единственной существенной характеристикой обработанной воды, определяющей всхожесть и рост семян редиса.
В Ферганской области, в рамках проекта (EU-AGRIN), реализуемого Программой развития Организации Объединенных Наций (ПРООН) совместно с Министерством сельского хозяйства Республики Узбекистан и финансируемого Европейским Союзом, изучена продуктивность и солеустойчивость нового сорта продовольственной бобовой культуры маш (Vigna radiata (L.) R. Wilczek), широко применяемой в республике. В статье приведены результаты тестирования продуктивности нового сорта маша Баркарор на староорошаемых луговых сазово-аллювиальных легко суглинистых засоленных почвах в Дангаринском районе Ферганской области Узбекистана. Исследованы свойства почв. Проверено воздействие микробиологического препарата TERIA-S и химического препарата Биосолвент на изменение показателей засоленности и плодородия почвы за период вегетации маша, при однократном орошении культуры. Изучено изменение химического состав солей и установлено, что в вариантах с применением Тeria-S и Контроль содержание сульфата кальция снизилось, а содержание сульфата магния увеличилось. В варианте с применением препарата Биосолвент, содержащего органическую кислоту, в почве снизилось содержание солей, как кальция, так и магния. Установлена статистическая значимость зависимости урожая маша от засоленности почвы для условий Ферганской области и получено уравнение, позволяющее прогнозировать урожай маша сорта Баркарор при снижении или повышении засоления почвы.
Статистика статьи
Статистика просмотров за 2026 год.
Издательство
- Издательство
- ВНИИ агрохимии
- Регион
- Россия, Москва
- Почтовый адрес
- 127434, г. Москва, ул. Прянишникова, дом 31а
- Юр. адрес
- 127434, г. Москва, ул. Прянишникова, дом 31а
- ФИО
- Шкуркин Сергей Иванович (Директор)
- E-mail адрес
- info@vniia-pr.ru
- Контактный телефон
- +8 (499) 9763750
- Сайт
- https://vniia-pr.ru