Двустворчатые моллюски Arctica islandica (Linnaeus, 1776) широко распространены в Северной Атлантике и прилегающих полярных водах, включая Белое море. Они стали объектом обширных исследований благодаря своему промысловому значению и чрезвычайной долговечности. Однако мало что известно об их трофическом поведении за исключением нескольких лабораторных экспериментов, использовавших культивированные водоросли. В этом исследовании моллюскам (средняя длина раковины 23.4 ± 1.89 мм, сырой вес 3.15 ± 0.85 г) в качестве пищи был предложен планктон, свежесобранный в прибрежных водах Белого моря. В течениe 4-часового эксперимента Arctica поглотили широкий спектр частиц, от пикопланктонных цианобактерий (<2 мкм) и нано-криптофит до цепочек диатомей (>250 мкм в длину). Скорости фильтрации, измеренные на разных видах планктона, варьировали от 0.53 л ч-1 до 4.27 л ч-1. Максимальные удельные скорости фильтрации Arctica (6.02 л ч-1 г-1 сырого веса тканей) соответствовали ранее опубликованным показателям для литоральных мидий, таких как Mytilus edulis Linnaeus, 1758. Рассчитанная селективность питания увеличивалась нелинейно с размером пищевых частиц. Однако моллюски также выбирали между клетками схожего размера и таксономической принадлежности. В дополнение к предпочитаемому диатомовому фитопланктону моллюски отфильтровывали гетеротрофных динофлагеллят и других микроконсументов. На основании скорости поглощения планктона рацион Arctica равнялся ~1% углерода ее тканей в день и соответствовал рассчитанной удельной скорости роста 0.003 д-1.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
The bivalve Arctica islandica (Linnaeus, 1776), the only extant species of the family Arcticidae (Morton 2011), is widely distributed in the North Atlantic, including Iceland, the western Baltic Sea, and the Barents Sea (Nicol 1951). Commonly known as the ocean quahog, Arctica is among seven most important species for clam fisheries (Gosling 2015) and a staple food for demersal fish such as the Atlantic cod (Morton 2011). As the longest living non-colonial animal known to science (>500 years, Butler et al. 2013), it became a model organism in aging (Holtze et al. 2021) and paleo-oceanography research (Schöne 2013; Reynolds et al. 2016). In the White Sea, which is the easternmost part of A. islandica extant range (Dalhgren et al. 2000), this clam inhabits sublittoral silty and sandy sediments (Naumov 2006). Its maximal densities occur at 10–15 m depth (Isachenko 2013; Gerasimova 2021).
Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.
Список литературы
1. Ballesta-Altero I., Witbaard R., Carroll M.R., and van den Meer J. 2017. Environmental factors regulating gaping activity of the bivalve Arctica islandica in Northern Norway. Marine Biology, 164: 116. DOI: 10.1007/s00227-017-3144-7 EDN: YEPTSY
2. Ballesta-Artero I., Janssen R., van der Meer J., and Witbaard R. 2018. Interactive effects of temperature and food availability on the growth of Arctica islandica (Bivalvia) juveniles. Marine Environmental Research, 133: 67-77. DOI: 10.1016/j.marenvres.2017.12.004 EDN: JPLUXP
3. Båmstedt U., Gifford D.J., Irigoien X., Atkinson A. and Roman M. 2000. Feeding. In: R.P. Harris et al. (Eds). ICES Zooplankton methodology manual. Academic Press, San Deigo: 297-380. DOI: 10.1016/b978-012327645-2/50009-8
4. Basova L., Begum S., Strahl J., Sukhotin A., Brey T., Phillip E. and Abele D. 2012. Age-dependent patterns of antioxidants in Arctica islandica from six regionally separate populations with different lifespans. Aquatic Biology, 14: 141-152. DOI: 10.3354/ab00387 EDN: PDGKSR
5. Basova L., Strahl J., Philipp E.E.R., Brey T., Sukhotin A., and Abele D. 2017. Lipofuscin accumulation in tissues of Arctica islandica indicates faster aging in populations from brackish environments. Marine Biology, 164: 72. https://doi. DOI: 10.1007/s00227-017-3110-4 EDN: YVKTTV
6. Bates S.S., Hubbard K.A., Lundholm N. and Montresor M. 2018. Pseudonitzschia, Nitzschia, and domoic acid: new research since 2011. Harmful Algae, 79: 3-43. DOI: 10.1016/j.hal.2018.06.001 EDN: CMPSEN
7. Bayne B.L. 2004. Phenotypic flexibility and physiological tradeoffs in the feeding and growth of marine bivalve molluscs. Integrative and Comparative Biology, 44: 425-432. DOI: 10.1093/icb/44.6.425 EDN: IPOHQT
8. Begum S., Basova L., Strahl J., Sukhotn A., Heilmayer S., Phillip E., Brey T. and Abele D. 2009. A metabolic model for the ocean quahog Arctica islandica - effects of animal mass and age, temperature, salinity, and geography on respiration rate. Journal of Shellfish Research, 28: 533-539. DOI: 10.2983/035.028.0315 EDN: OHHLHD
9. Begum S., Basova L., Heilmayer O., Phillip E.E.R., Abele D. and Brey T. 2010. Growth and energy budget models of the bivalve Arctica islandica at six different sites in the Northeast Atlantic realm. Journal of Shellfish Research, 29: 107-115. DOI: 10.2983/035.029.0103 EDN: MXMJZD
10. Bonitz F.G.W., Andersson C., Trofimova T. and Hàtún H. 2018. Links between phytoplankton dynamics and shell growth of Arctica islandica on the Faroe Shelf. Journal of Marine Systems, 179: 72-87. DOI: 10.1016/j.jmarsys.2017.11.005
11. Bougrier S., Hawkins A.J.S. and Héral M. 1997. Preingestive selection of different microalgal mixtures in Crassostrea gigas and Mytilus edulis, analyzed by flow cytometry. Aquaculture, 150: 123-134. DOI: 10.1016/s0044-8486(96)01457-3 EDN: AHUXGD
12. Brey T., Arntz W.E., Pauly D. and Rumohr H. 1990. Arctica (Cyprina) islandica in Kiel Bay (Western Baltic): growth, production and ecological significance. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 136: 217-235. DOI: 10.1016/0022-0981(90)90162-6
13. Brey T., Müller-Wiegmann C., Zittier Z.M.C. and Hagen W. 2010. Body composition in aquatic organisms - a global data bank of relationships between mass, elemental composition and energy content. Journal of Sea Research, 64: 334-340. DOI: 10.1016/j.seares.2010.05.002
14. Butler P.G., Wanamaker A.D. Jr., Scourse J.D., Richardson C.A. and Reynolds D.J. 2013. Variability of marine climate on the North Icelandic Shelf in a 1357-year proxy archive based on growth increments in the bivalve Arctica islandica. Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology, 373: 141-151. DOI: 10.1016/j.palaeo.2012.01.016
15. Coughlin J. 1969. The estimation of filtering rate from the clearance of suspensions. Marine Biology, 2: 356-358. DOI: 10.1007/bf00355716 EDN: WTKKBC
16. Cranford P.J., Emerson C.W., Hargrave B.T. and Milligan T.G. 1998. In situ feeding and absorption responses of sea scallops Placopecten magellanicus (Gmelin) to storm-induced changes in the quantity and composition of the seston. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 219: 45-70. DOI: 10.1016/s0022-0981(97)00174-3
17. Cranford P.J., Strohmeier T., Filgueira R. and Strand Ø. 2016. Potential methodological influences on the determination of particle retention efficiency by suspension feeders: Mytilus edulis and Ciona intestinalis. Aquatic Biology, 25: 61-73. DOI: 10.3354/ab00660 EDN: YWRKCT
18. Dahlgren T.G., Weinberg J.R. and Halanych K.M. 2000. Phylogeography of the ocean quahog (Arctica islandica): influences of paleoclimate on genetic diversity and species range. Marine Biology, 137: 487-495. DOI: 10.1007/s002270000342 EDN: AVJEVJ
19. Franzé G. and Lavrentyev P.J. 2014. Microzooplankton growth rates examined across a temperature gradient in the Barents Sea. Plos ONE, 9(1): e86429. DOI: 10.1371/journal.pone.0086429 EDN: SRIZIN
20. Gerasimova A.V. 2021. Spatial-temporal organization of marine bivalve beds (on the example of the White Sea). The Doctor of Biological Sciences thesis. SPBGU, Saint Petersburg, 572 p. [In Russian]. EDN: MYLVKK
21. Gerasimova A.V. and Maximovich N.V. 2013. Age-size structure of common bivalve mollusc populations in the White Sea: the causes of instability. Hydrobiologia, 706: 119-137. DOI: 10.1007/s10750-012-1415-3 EDN: RFCYGF
22. Gerasimova A.V., Maximovich N.V. and Fillipova N.A. 2022. Mortality and survival in marine bivalve beds under undisturbed environmental conditions (in the White Sea). Inland Water Biology, 15: 875-890. DOI: 10.1134/s1995082922060050 EDN: AOLFVL
23. Gifford D.J. 1985. Laboratory culture of marine planktonic oligotrichs (Ciliophora, Oligotrichida). Marine Ecology Progress Series, 23: 257-267. DOI: 10.3354/meps023257
24. Gosling E. 2015. Marine bivalve molluscs. 2nd ed. John Willey and Sons, Ltd, Chichester, 544 p.
25. Hargraves P.E. 2002. The ebridian flagellates Ebria and Hermesinum. Plankton Biology and Ecology, 49: 9-16. EDN: LQCEMT
26. Holtze S., Gorshkova E., Braude S. et al. 2021. Alternative animal models of aging research. Frontiers in Molecular Biosciences, 8: 660959. DOI: 10.3389/fmolb.2021.660959 EDN: XRQPLM
27. Ilyash L.V., Radchenko I.G., Novigatsky A.N., Lisitzin A.P. and Shevchenko V.P. 2013. Vertical flux of phytoplankton and particulate matter in the White Sea according to the long-term exposure of sediment traps. Oceanology, 53: 216-224. DOI: 10.1134/s0001437013020057 EDN: RFEYCR
28. Isachenko A.I. 2013. The structure of the bed of the marine bivalve Arctica islandica (Linnaeus, 1967) in space and time. Abstract of The Candidate of Biological Science thesis. MGU, Moscow, 21 p. [In Russian]. EDN: SURBKN
29. Kiørboe T. and Møhlenberg F. 1981. Particle selection in suspension-feeding bivalves. Marine Ecology Progress Series, 5: 291-296. DOI: 10.3354/meps005291
30. Krapivin V.A., Bakhmet I.N. and Lezin P.A. 2008. Interactions between the nemertine Malacobdella grossa (Muller, 1776) and the bivalve Arctica islandica (L., 1767). Herald of Saint Petersburg State University, 3: 47-51. [In Russian].
31. Kreeger D.A. and Newell R.I.E. 1996. Ingestion and assimilation of carbon from celluolytic bacteria and heterotrophic flagellates by the mussels Geukensia demissa and Mytilus edulis (Bivalvia, Mollusca). Aquatic Microbial Ecology, 11: 205-214. DOI: 10.3354/ame011205
32. Lavrentyev P.J., Gardner W.S. and Yang L. 2000. Effects of the zebra mussel on nitrogen dynamics and the microbial community at the sediment-water interface. Aquatic Microbial Ecology, 21: 187-194. DOI: 10.3354/ame021187
33. Lezin P.A., Agat’eva N.A. and Khalaman V.V. 2006. A comparative study of the pumping activity of some fouling animals from the White Sea. Russian Journal of Marine Biology, 32: 245-249. DOI: 10.1134/s1063074006040079 EDN: LJQTUT
34. Lorenzen C.J. 1967. Determination of chlorophyll and pheopigments: spectrophotometric equations. Limnology and Oceanography, 12: 343-346. DOI: 10.4319/lo.1967.12.2.0343
35. Matsuyama Y., Uchida T. and Honjo T. 1997. Toxic effects of the dinoflagellate Heterocapsa circularisquama on clearance rate of the blue mussel Mytilus galloprovincialis. Marine Ecology Progress Series, 146: 73-80. DOI: 10.3354/meps146073
36. Menden-Deuer S. and Lessard E.J. 2000. Carbon to volume relationships for dinoflagellates, diatoms, and other protist plankton. Limnology and Oceanography, 45: 569-579. DOI: 10.4319/lo.2000.45.3.0569
37. Milano S., Nehrke G., Wanamaker A.D. Jr., Ballesta-Artero I., Brey T. and Schöne B.R. 2017. The effects of environment on Arctica islandica shell formation and architecture. Biogeosciences, 14: 1577-1591. DOI: 10.5194/bg-14-1577-2017 EDN: YZTUER
38. Mitra A., Caron D.A., Faure E. et al. 2023. The mixoplankton database (MDB): diversity of photo-phagotrophic plankton in form, function and distribution across the global ocean. Journal of Eukaryotic Microbiology, 70: e12972. DOI: 10.1111/jeu.12972 EDN: XLDUBG
39. Møhlenberg F. and Riisgård H.U. 1978. Efficiency of particle retention in 13 species of suspension feeding bivalves. Ophelia, 17: 239-246. DOI: 10.1080/00785326.1978.10425487
40. Møhlenberg F. and Riisgård H.U. 1979. Filtration rate, using a new indirect technique, in thirteen species of suspension-feeding bivalves. Marine Biology, 54: 143-147. DOI: 10.1007/bf00386593 EDN: MMLOHV
41. Montagnac V., Guyondet T., Comeau L. and Tremblay R. 2020. Physiological differences between wild and cultured bivalves in Prince Edward Island, Canada. Aquatic Living Resources, 33: 8. DOI: 10.1051/alr/2020008 EDN: WSBNLF
42. Morton B. 2011. The biology and functional morphology of Arctica islandica (Bivalvia: Arcticidae) - a gerontophilic living fossil. Marine Biology Research, 7: 540-553. DOI: 10.1080/17451000.2010.535833 EDN: ONJHLP
43. Naumov A.D. 2006. Clams of the White Sea. Ecological and faunistic analysis. ZIN RAN, Saint. Petersburg: 367 p. [In Russian]. https://zin.ru/publications/books/clamswhitesea.
44. Nicol D. 1951. Recent species of the veneroid pelecypod Arctica. Journal of Washington Academy of Sciences, 41: 102-106.
45. Pérez Blanco E., Karlsson C., Pallon J., Yasumoto T. and Graneli E. 2015. Cellular nutrient content measured with the nuclear microprobe and toxins produced by Dinophysis norvegica (Dinophyceae) from the Trondheim fjord (Norway). Aquatic. Microbial Ecology, 75: 259-260. DOI: 10.3354/ame01762
46. Poitevin O., Thébault J., Siebert V. et al. 2019. Growth response of Arctica islandica to North Atlantic oceanographic conditions since 1850. Frontiers in Marine Science, 6: 483. DOI: 10.3389/fmars.2019.00483
47. Qiao L., Chang Z., Li J. and Li T. 2022. Selective feeding of three bivalve species on the phytoplankton community in a marine pond revealed by high-throughput sequencing. Scientific Reports, 12: 6163. DOI: 10.1038/s41598-022-08832-7 EDN: TETSYT
48. R Core Team. 2024. R: A language and environment for statistical computing. Vienna: R Foundation for Statistical Computing. https://www.R-project.org.
49. Radchenko I., Smirnov V., Ilyash L. and Sukhotin A. 2021. Phytoplankton dynamics in a subarctic fjord during the under-ice - open water transition. Marine Environmental Research, 164: 105242. DOI: 10.1016/j.marenvres.2020.105242 EDN: CVJYYU
50. Radchenko I., Smirnov V., Usov N. and Sukhotin A. 2022. Seasonal Dynamics of Phytoplankton in the Chupa Inlet (Kandalaksha Bay, White Sea). Moscow University Biological Sciences Bulletin, 77: 32-39. DOI: 10.3103/s0096392522010047 EDN: EXIGNI
51. Reynolds D.J., Scourse J.D., Halloran P.R. et al. 2016. Annually resolved North Atlantic marine climate over the last millennium. Nature Communications, 7: 13502. DOI: 10.1038/ncomms13502 EDN: YXCXST
52. Ricciardi A. and Bourget E. 1998. Weight-to-weight conversion factors for marine benthic macroinvertebrates. Marine Ecology Progress Series, 163: 245-251. DOI: 10.3354/meps163245
53. Riisgård H.U. 2001. On measurement of filtration rates in bivalves - the stony road to reliable data: review and interpretation. Marine Ecology Progress Series, 211: 275-291. DOI: 10.3354/meps211275
54. Riisgård H.U. 2004. Intercalibration of methods for measurement of bivalve filtration rates - a turning point. Marine Ecology Progress Series, 276: 307-308. DOI: 10.3354/meps276307
55. Riisgård U.H. and Seerup D.F. 2003. Filtration rates in the soft clam Mya arenaria: effects of temperature and body size. Sarsia, 88: 415-428. DOI: 10.1080/00364820310003208
56. Rosa M., Ward E.J. and Shumway S.E. 2018. Selective capture and ingestion of particles by suspension-feeding bivalve molluscs: a review. Journal of Shellfish Research, 37: 727-774. DOI: 10.2983/035.037.0405
57. Schöne B.R. 2013. Arctica islandica (Bivalvia): a unique paleoenvironmental archive of the northern North Atlantic Ocean. Global Planetary Change, 111: 199-225. DOI: 10.1016/j.gloplacha.2013.09.013 EDN: SOIMOX
58. Sherr E.B. and Sherr B.F. 2007. Heterotrophic dinoflagellates: a significant component of microzooplankton biomass and major grazers of diatoms in the sea. Marine Ecology Progress Series, 352: 187-197. DOI: 10.3354/meps07161
59. Shumway S.E., Cucci T.L., Newell R.C. and Yentsch C.M. 1985. Particle selection, ingestion, and absorption in filter-feeding bivalves. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 91: 77-92. DOI: 10.1016/0022-0981(85)90222-9
60. Spetnitskaya N.A., Gogorev R.M. and Ivanov M.V. 2008. Characteristics of phytoplankton feeding by cultivated mussels (Mytilus edulis L.) in the White Sea. Herald of Saint Petersburg State University, 3: 39-46. [In Russian].
61. Strahl J., Brey T., Philipp E.E.R., Thorarinsdottir G., Fischer N., Wessels W. and Abele D. 2011. Physiological responses to self-induced burrowing and metabolic rate depression in the ocean quahog Arctica islandica. Journal of Experimental Biology, 214: 4223- 4233. DOI: 10.1242/jeb.055178 EDN: PGFHSX
62. Strohmeier T., Strand Ø., Alunno-Bruscia M., Duinker A. and Cranford P.J. 2012. Variability in particle retention efficiency by the mussel Mytilus edulis. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 412: 96-102. DOI: 10.1016/j.jembe.2011.11.006
63. Sukhotin A.A., Lajus D.L. and Lesin P.A. 2003. Influence of age and size on pumping activity and stress resistance in the marine bivalve Mytilus edulis L. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 284: 129-144. DOI: 10.1016/s0022-0981(02)00497-5 EDN: LHZAPL
64. Sun J. and Liu D. 2003. Geometric models for calculating cell biovolume and surface area for phytoplankton. Journal of Plankton Research, 25: 1331-1346. DOI: 10.1093/plankt/fbg096 EDN: IYRPNR
65. Takashi K., Ichinomiya M., Okazaki Y. and Nishibe Y. 2023. Higher ingestion rates and importance of ciliates in the diet of a large, subarctic copepod revealed by larger volume incubations. Limnology and Oceanography, 68: 790-802. DOI: 10.1002/lno.12310 EDN: PMQBIM
66. Taylor A.C. 1976. Burrowing behaviour and anaerobism in the bivalve Arctica islandica. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 56: 95-109. DOI: 10.1017/s0025315400020464
67. Treasurer J.W., Hannah F. and Cox D. 2003. Impact of a phytoplankton bloom on mortalities and feeding response of farmed Atlantic salmon, Salmo salar, in west Scotland. Aquaculture, 218: 103-113. DOI: 10.1016/s0044-8486(02)00516-1 EDN: BFVGTH
68. Usov N., Kutcheva I., Primakov I. and Martynova D. 2013. Every species is good in its season: Do the shifts in the annual temperature dynamics affect the phenology of the zooplankton species in the White Sea? Hydrobiologia, 706: 11-33. DOI: 10.1007/s10750-012-1435-z EDN: PMKKMO
69. Usov N.V., Khaitov V.M., Kutcheva I.P. and Martynova D.M. 2021. Phenological responses of the Arctic, ubiquitous, and boreal copepod species to long-term changes in the annual seasonality of the water temperature in the White Sea. Polar Biology, 44: 959-976. DOI: 10.1007/s00300-021-02851-2 EDN: NRZRMH
70. Van der Schatte Olivier A., Jones L., Le Vay L., Christie M., Wilson J. and Malham S.K. 2020. A global review of the ecosystem services provided by bivalve aquaculture. Reviews in Aquaculture, 12: 3-25. DOI: 10.1111/raq.12301
71. Vanderploeg H.A. and Scavia D. 1979. Two electivity indices for feeding with special reference to zooplankton grazing. Journal of the Fisheries Research Board of Canada, 36: 362-365. DOI: 10.1139/f79-055
72. Verity P.G., Robertson C.Y., Tronzo C.R., Andrews M.G., Nelson J.R. and Sieracki M.E. 1992. Relationships between cell volume and the carbon and nitrogen content of marine photosynthetic nanoplankton. Limnology and Oceanography, 37: 1434-1446. DOI: 10.4319/lo.1992.37.7.1434
73. Ward E.J. and Shumway S.E. 2004. Separating the grain from the chaff: particle selection in suspension- and deposit-feeding bivalves. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 300: 83-130. DOI: 10.1016/j.jembe.2004.03.002
74. Winter J.E. 1969. Über den Einfluss Der Nahrung Konzentration und anderer Faktoren auf Filterleistung und Nahrungsausnutzung der Muschen Arctica islandica und Modiolus modiolus. Marine Biology (Berlin), 4: 7-135. DOI: 10.1007/bf00347037 EDN: JBGBWM
75. Winter J.E. 1978. A review on the knowledge of suspension-feeding in lamellibranchiate bivalves, with special reference to artificial aquaculture systems. Aquaculture, 13: 1-33. DOI: 10.1016/0044-8486(78)90124-2
76. Witbaard R., Franken R. and Visser B. 1997. Growth of juvenile Arctica islandica under experimental conditions. Helgoländer Meeresuntersuchungen, 51: 417-431. DOI: 10.1007/bf02908724 EDN: LTOXWQ
77. Witbaard R., Jansma E. and Saas Klaassen U. 2003. Copepods link quahog growth to climate. Journal of Sea Research, 50: 77-83. DOI: 10.1016/s1385-1101(03)00040-6 EDN: LZRWIL
Выпуск
Другие статьи выпуска
Усиление биосинтеза каталазы, антиоксидантного фермента, рассматривается в литературе как часть физиологического механизма, поддерживающего жизнеспособность комаров в стрессовых условиях. Недавно при определении активности каталазы в гомогенатах самцов комаров Aedes (Aedes) geminus Peus и Culex territans Walker автором показано, что у неокрепших и незрелых имаго активность фер мента повышена; далее в онтогенезе уровень активности фермента снижается и выходит на плато. В настоящей работе проведена проверка этой закономерности у самцов комаров двух видов из подро да Ochlerotatus рода Aedes. Активность каталазы измерена в гомогенатах недавно слинявших и зрелых самцов A. (O.) communis (de Geer) и A. (O.) cantans (Meigen), выявлены различия в удельной активно сти фермента между возрастными группами, аналогичные обнаруженным ранее у других видов кома ров: в возрасте менее 1 суток от выплода активность фермента значимо выше, чем в период от 3-4 до 8-10 суток. Повышенная активность каталазы, выявленная у самцов возраста менее 1 суток, вероятно, связана со стрессовым состоянием насекомого во время и/или сразу после метаморфоза. Возможно, повышенная активность каталазы в период после линьки необходима в связи с продукцией пероксида водорода при биосинтезе меланина. Выявленная динамика каталазной активности может индуктивно рассматриваться как общая закономерность среди комаров семейства Culicidae.
Птицы играют ключевую роль в функционировании большинства крупных экосистем планеты и являются важными объектами биомониторинга. Традиционные методы их изучения нередко имеют ограничения, особенно при исследовании редких, скрытных, мигрирующих видов или видов, обитающих в труднодоступных местах. Сложности с организацией полевых наблюдений, плохие погодные условия и разница в квалификации специалистов могут существенно искажать получаемые данные или даже делать их анализ невозможным. ДНК окружающей среды (экологическая ДНК, эДНК, environmental DNA, eDNA) - это неинвазивный и высокопроизводительный инструмент оценки биоразно образия, который постепенно входит в практику экологических исследований по всему миру. Наиболее впечатляющие результаты его применения связаны с изучением ихтиофауны, однако в последние несколько лет анализ эДНК также стал использоваться в орнитологии. Тем не менее, целенаправленные исследования птиц с применением эДНК проводятся сравнительно редко, что связано с отсутствием достаточной апробации методик. Актуальные данные (по состоянию на начало 2025 г.) позволяют утверждать, что эДНК может стать ценным инструментом для изучения биоразнообразия и экологии птиц. Методы, основанные на анализе эДНК, уже доказали свою эффективность в обнаружении водоплавающих и околоводных птиц, а также видов, не связанных с водной средой, например птиц-опылителей. В данной статье представлен обзор применения метода эДНК для детекции птиц в различных экосистемах - от тропических лесов до полярных широт, включая как водные, так и наземные среды. Рассматриваются основные направления использования метода, такие как идентификация отдельных видов и оценка разнообразия авифауны. Особое внимание уделяется меташтрихкодированию эДНК как наиболее перспективному подходу, способному значительно повысить производительность биомониторинговых исследований птиц.
Впервые изучено строение сейсмосенсорной системы и установлена топография сейсмосенсорных каналов у нототениевидных рыб рода Bovichtus Valenciennes in Cuvier & Valenciennes, 1832: B. diacanthus Carmichael, 1810, B. psychrolutes Günther, 1861, B. angustifrons Regan, 1913 и B. oculus Hardy, 1988, а также у представителей двух других родов семейства бовихтовых - Cottoperca Steindachner, 1875 и Halaphritis Last, Balushkin et Hutchins, 2002, обитающих в нотальных водах Южного полушария. Проведено сравнение топографии каналов между изученными родами и видами Bovichtidae, установлены их диагностические признаки и различия. Особое внимание уделено строению костей, через которые проходят каналы, а именно: костным элементам окологлазничного кольца, плечевого пояса (posttemporale и supratemporale), неврокраниума (parietale, supraoccipitale, extrascapulare laterale и nasale) и периферийным структурам (канальцам и порам) как различных видов, так и родов. Для рода Bovichtus выявлено следующее направление эволюционных преобразований в ряду B. diacanthus - B. veneris - B. psychrolutes - B. oculus: редукция периферийных структур на голове, редукция костной крыши на большей части затылочной комиссуры и вытянутая форма члеников с выемкой для канальца сбоку. Неотенические признаки обнаружены у B. oculus, который ранее был сведён в синонимию B. psychrolutes - первичные поры в предкрышечно-нижнечелюстном канале, длинный участок надглазничного канала в nasale и меньшее развитие кожных образований сенсорных каналов головы. Функциональное значение обнаруженных преобразований предположительно связано с местом и глубиной обитания рыб, способом поиска пищи.
Обновлен кадастр находок болотной черепахи Emys orbicularis (Linnaues, 1758) в Казахстане. Уточнены старые сведения о находках вида, имевших неточные привязки к местности и/или неточное датирование. Новые сведения для бассейнов рек Ори, Илека, Уила и Эмбы подтверждают данные по обитанию здесь черепахи почти полувековой и вековой давности. Дополнительные пункты встреч E. orbicularis на севере Тургайской столовой равнины обрисовывают северо-восточные пределы распространения вида в Казахстане. Черепаха найдена на правых притоках р. Иргиз, заметно пересыхающих в летний сезон. Единичные встречи зарегистрированы в прибрежной зоне казахстанского сектора Каспия с соленостью воды до 12-13‰. По разрозненным данным 1990-2020 гг., встречаемость черепахи в Западном Казахстане варьирует от 1-3 до 9-10 особей на километр. Сезон размножения от спаривания до откладки яиц длится с третьей декады апреля по июнь включительно, выход сеголеток происходит в августе. Зарегулирование стока рек, забор воды и ее загрязнение, выпас скота, браконьерские сети, строительство мостов, дамб, прокладка дорог, сопровождающиеся гибелью черепах и разрушением мест обитания, лимитируют стабильность популяций E. orbicularis в Казахстане.
В работе освещаются результаты ревизии коллекций из раскопок 1950-х гг. и изучения новых палеонтологических материалов многослойной верхнепалеолитической стоянки Костёнки 17 (Спицынская). Фауна включает 15 видов млекопитающих, среди которых присутствуют широко распространённые виды, имеющие голарктический ареал, представители широколиственных и смешанных лесов и мигранты из аридных территорий - степей, полупустынь.
Один из массовых пролётных путей птиц в Европе - Беломорско-Балтийская миграционная трасса, проходящая по восточной Прибалтике. С целью изучения перелетов птиц путем кольцевания на Куршской косе была основана первая в мире орнитологическая станция Vogelwarte Rossitten, работу которой продолжила Биологическая станция «Рыбачий» Зоологического института РАН. За 19562020 гг. в этом месте сотрудниками Биостанции было окольцовано 3 миллиона 214 тысяч 217 особей птиц 202 видов и получено 10165 сообщений о дальних находках колец у 99 видов птиц. В статье представлен краткий обзор этих результатов. Основное внимание уделено следующим темам: а) результативности кольцевания разных видов птиц, включая падение доли возврата колец, б) географическому распределению мигрантов с примером миграционной связности между географическими областями в разные сезоны, в) возможностям изучения динамики численности популяций на основе данных ежегодного отлова, а также г) разным аспектам демографического изучения популяций по результатам кольцевания. Статья написана с целью ознакомления международной орнитологической общественности с нашими результатами кольцевания птиц, не вошедшими (по причинам, не связанными с наукой) в известный международный интерактивный атлас миграций и веб-сайт по ЕвразийскоАфриканскому пролётному пути птиц (2022 г.).
Издательство
- Издательство
- ЗИН РАН
- Регион
- Россия, Санкт-Петербург
- Почтовый адрес
- 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д. 1
- Юр. адрес
- 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д. 1
- ФИО
- Чернецов Никита Севирович (Директор)
- E-mail адрес
- director@zin.ru
- Контактный телефон
- +7 (812) 3280011
- Сайт
- https://zin.ru