ISSN 2658-6266 · EISSN 2658-6258

· Языки: ru / en

Статья: Оценка регенерационного потенциала каллусной ткани сортов Actinidia chinensis var. deliciosa (A. Chev.) C. F. Liang & A. R. Ferguson в культуре in vitro (2026)

Читать

Читать онлайн

Применение современных агробиотехнологических методов позволяет получать качественно новые высокорентабельные сорта актинидии с повышенным содержанием биологически активных веществ. Достижение подобных результатов возможно при комплексном изучении генетических ресурсов растений коллекции ВИР, в том числе и в асептических условиях in vitro. В этой связи актуальным является изучение вопросов индукции каллусогенеза с последующей пролиферацией у перспективных сортов Actinidia chinensis var. deliciosa (A. Chev.) C. F. Liang & A. R. Ferguson в условиях in vitro с целью их сохранения для дальнейшей селекции. Материалы и методы. Объектами исследования стали четыре сорта A. chinensis var. deliciosa коллекции ВИР ‘Hayward’, ‘Bruno’, ‘Monty’, ‘Allison’. В качестве эксплантов для введения в условия in vitro использовали молодые побеги проростков, выращенных в культуральных сосудах в условии климатической камеры. На данном этапе использовали три стерилизующих вещества. Побеги вводили в пробирки с питательной средой по прописи Мурасиге и Скуга (МС). На десятые сутки производили учет эффективности введения в культуру при стерилизации различными видами веществ. Для индукции каллусогенеза использовали листовые сегменты с микрорастений актинидии, которые помещали на питательную среду МС с различным сочетанием регуляторов роста. Для изучения эффективности препарата 3-гидрокситетрагидрофурана (рифтал), регулятора роста растений, был заложен опыт, в котором стабильно растущий каллус был пересажен на четыре варианта питательной среды МС с добавлением 1 мл/л препарата различной концентрации. Непосредственно для индукции органогенеза использовали каллус сортов актинидии, поддерживаемый в течение трех лет. Результаты и обсуждение. Наилучший результат с точки зрения эффективности стерилизации и жизнеспособности эксплантов показал вариант стерилизации побегов 10%-ным раствором «Белизны», универсальным моющим, дезинфицирующим и отбеливающим средством. Образование первичного каллуса отмечено на всех вариантах питательных сред для индукции каллусогенеза. При последующем культивировании каллусной ткани на питательных средах МС, содержащих 2,4-Д в своем составе, отмечено образование рыхлого, водянистого, бесхлорофилльного каллуса. В опыте по изучению влияния рифтала отмечен стабильный рост каллуса на всех вариантах питательных сред и зафиксировано образование корней у сортов ‘Hayward’, ‘Allison’, ‘Bruno’. Отмечен органогенез в каллусной ткани у всех изучаемых сортов. Заключение. Оценка регенерационного потенциала A. deliciosa у сортов ‘Hayward’, ‘Allison’, ‘Bruno’, ‘Monty’, позволила выявить сорта ‘Hayward’ и ‘Allison’ с наибольшим количеством регенерантов на органогенный каллус: 2,2 и 3,7 соответственно. Полученные результаты послужат основой для интенсификации селекционного процесса представителей рода Actinidia с применением современных молекулярно-генетических и биотехнологических методов, в том числе и с помощью геномного редактирования CRISPR/Cas.

Ключевые фразы: генетические ресурсы растений, actinidia (lindl), каллусная ткань, регенерация микрорастений in vitro, каллусогенез, органогенез

Автор (ы): Рахмангулов Руслан Султанович (Rahmangulov R. S.), Тихонова Надежда Геннадьевна (Tihonova N. G.), Иванов Александр Александрович (Ivanov A. A.), Ерастенкова Мария Викторовна (Erastenkova M. V.), Межина Ксения Максимовна (Mezhina K. M.), Евдокимов Евгений Владимирович (Evdokimov E. V.), Ухатова Юлия Васильевна (Uhatova Y. V.), Хлесткина Елена Константиновна (Hlestkina E. K.)

Журнал: БИОТЕХНОЛОГИЯ И СЕЛЕКЦИЯ РАСТЕНИЙ

Предпросмотр статьи

Идентификаторы и классификаторы

SCI: Биология
УДК: 631.52. Улучшение растений. Прикладная генетика. Селекция и т. д.
635.9. Декоративные растения. Декоративное садоводство

Для цитирования:

РАХМАНГУЛОВ Р. С., ТИХОНОВА Н. Г., ИВАНОВ А. А., ЕРАСТЕНКОВА М. В., МЕЖИНА К. М., ЕВДОКИМОВ Е. В., УХАТОВА Ю. В., ХЛЕСТКИНА Е. К. ОЦЕНКА РЕГЕНЕРАЦИОННОГО ПОТЕНЦИАЛА КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ СОРТОВ ACTINIDIA CHINENSIS VAR. DELICIOSA (A. CHEV.) C. F. LIANG & A. R. FERGUSON В КУЛЬТУРЕ IN VITRO // БИОТЕХНОЛОГИЯ И СЕЛЕКЦИЯ РАСТЕНИЙ. 2026. № 1, ТОМ 9

Текстовый фрагмент статьи

Моя история просмотров (5)

01. Статья: ПРОДУКТИВНОСТЬ МИКРОЗЕЛЕНИ И ТОМАТОВ ОТКРЫТОГО ГРУНТА ПРИ ОБРАБОТКЕ ГУМАТОМ КАЛИЯ: ВЛИЯНИЕ ПОГОДНЫХ УСЛОВИЙ И АККУМУЛЯЦИЯ НИТРАТОВ

02. Статья: ДНК-ИДЕНТИФИКАЦИЯ СОРТОВ И ВИДОВ КОЗЛЯТНИКА (GALEGA) С ПРИМЕНЕНИЕМ SRAP-МАРКЕРОВ И РЕСТРИКЦИОННОГО АНАЛИЗА СПЕЙСЕРА TRNH-PSBA

03. Статья: ОТ СЕТЕВЫХ СЕРВИСОВ К НОВЫМ СОЦИОКУЛЬТУРНЫМ ПРАКТИКАМ: РОССИЙСКИЙ КОНТЕКСТ ЦИФРОВОЙ ТРАНСФОРМАЦИИ

04. Статья: БИОЛОГИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ ХЛОРЕЛЛЫ ДЛЯ ВЫРАЩИВАНИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ И ПТИЦ (ОБЗОР)

05. Статья: Концентрация основных растворимых ионов в ядре булгунняха на месторождении Песцовое, в долине реки Евояха, юг Тазовского полуострова

Будьте первым, кто начнет обсуждение

Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.

Создать тему для обсуждения

Список литературы

1. Айба Л.Я. Культура киви в субтропической зоне Абхазии. Садоводство и виноградарство. 2004;(5):22-24.
2. Chakravarty B. Plantlet regeneration from long-term callus cultures of Citrus acida Roxb. and the uniformity of regenerated plants. Scientia Horticulturae. 1999;82(1):159-169. DOI: 10.1016/S0304-4238(99)00047-3
3. Corsi B., Riccioni L., Forni C. In vitro cultures of Actinidia deliciosa (A. Chev) C.F. Liang & A.R. Ferguson: A tool to study the SAR induction of chitosan treatment. Organic Agriculture. 2014;5(3):189-198. DOI: 10.1007/s13165-014-0087-x EDN: XKPOGW
4. Дыдыкин А.С., Асланова М.А. Функциональное питание - новая концепция здорового образа жизни. Агротехника и технологии. 2016;(3):43.
5. FAOSTAT. The Food and Agriculture Organization (FAO) of the United Nations. Domains: Production. Items: Aggregated. Fruit primary. Available from: https://www.fao.org/faostat/ru/#data/QCL/visualize [accessed November 18, 2024].
6. Федеральная научно-техническая программа развития сельского хозяйства на 2017-2030 годы. Постановление Правительства Российской Федерации от 25 августа 2017 г. №996 “Об утверждении Федеральной научно-технической программы развития сельского хозяйства на 2017-2030 годы”. 2017. URL: https://minobrnauki.gov.ru/about/deps/dkdovssn/fntp/ [дата обращения: 24.02.2026].
7. Фотев Ю.В., Пивоваров В.Ф., Артемьева А.М., Куликов И.М., Гончарова Ю.К., Сысо А.И., Гончаров Н.П. Концепция создания Российской национальной системы функциональных продуктов питания. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(7):776-783. DOI: 10.18699/VJ18.421 EDN: VLJGRK
8. Гвасалия М.В. Клональное микроразмножение растений чая (Thea sinensis L.) в культуре in vitro. Садоводство и виноградарство. 2013;(3):20-22. EDN: RAMRGH
9. Гвасалия М.В. Изучение генетического разнообразия in vitro сомаклонов чая (Camellia sinensis (L.) O. Kuntze) методами SSR и ISSR анализа полногеномной ДНК. Плодоводство и виноградарство Юга России. 2021;69(3):76-85. DOI: 10.30679/2219-5335-2021-3-69-76-85 EDN: XTXVVA
10. Хлесткина Е.К., Шумный В.К. Перспективы использования прорывных технологий в селекции: система CRISPR/Cas9 для редактирования генома растений. Генетика. 2016;52(7):774-787. DOI: 10.7868/S0016675816070055 EDN: WDOPHX
11. Колбасина Э.И. Актинидии и лимонник в России (биология, интродукция, селекция). Москва: Росссельхозакадемия; 2000.
12. Колбасина Э.И., Козак Н.В. О ценных коллекционных образцах актинидии аргута. Садоводство и виноградарство. 2014;(3):6-11. EDN: SHBMSX
13. Коломиец Т.М., Маляровская В.И., Гвасалия М.В., Самарина Л.С., Соколов Р.Н. Микроразмножение in vitro субтропических, декоративных культур и эндемиков Западного Кавказа: оригинальные и оптимизированные протоколы. Сельскохозяйственная биология. 2014;49(3):49-58. EDN: SHAWPH
14. Коновалова Л.Н., Малаева Е.В., Молканова О.И. Оценка ресурсного потенциала и оптимизация технологии клонального микроразмножения представителей семейства Actinidiaceae Van-Tiegh. Вестник КрасГАУ. Красноярск. 2008;(6):42-46. EDN: KOHCXX
15. Козак Н.В., Темирбекова С.К., Куликов И.М. Актинидия коломикта селекции ВСТИСП. Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2015;1:43-45.
16. Krakhmaleva I.L., Molkanova O.I., Orlova N.D., Koroleva O.V., Mitrofanova I.V. Plant growth regulators on the micropropagtion of Actinidia cultivars. Ciencia e Agrotecnologia. 2023;47:e008923. DOI: 10.1590/1413-7054202347008923
17. Кулуев Б.Р., Кирьянова О.Ю., Геращенков Г.А., Рожнова Н.А., Гумерова Г.Р., Вершинина З.Р., Матниязов Р.Т., Ахметзянова Л.У., Князев А.В., Михайлова Е.В., Гарафутдинов Р.Р., Баймиев Ан.Х., Губайдуллин И.М., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. Некоторые новшества в CRISPR/Cas геномном редактировании и в смежных областях. Биомика. 2019;11(3):315-343. DOI: 10.31301/2221-6197.bmcs.2019-27
18. Latocha P., Jankowski P., Radzanowska J. Genotypic difference in postharvest characteristics of hardy kiwifruit (Actinidia arguta and its hybrids), as a new commercial crop. Food Research International. 2011;44(7):1936-1945. DOI: 10.1016/j.foodres.2011.01.033
19. Lebedeva M.A., Tvorogova V.E., Tikhodeev O.N. Epigenetic mechanisms and their role in plant development. Russian Journal of Genetics. 2017;53(10):1057-1071. DOI: 10.1134/S1022795417090083
20. Маляровская В.И., Коломиец Т.М., Самарина Л.С. Методика клонального микроразмножения и сохранения видов природной флоры и красивоцветущих кустарников в условиях in vitro. Сочи: Федеральный исследовательский центр “Субтропический научный центр Российской академии наук”; 2020. EDN: YKVCWY
21. Маляровская В.И., Мацькив А.О., Тутберидзе Ц.В. Особенности индукции ризогенеза в условиях in vitro представителей рода Actinidia Lindl. Субтропическое и декоративное садоводство. 2024;(88):133-145. DOI: 10.31360/2225-3068-2024-88-133-145 EDN: RCZNSM
22. Маляровская В.И., Мацькив А.О., Тутберидзе Ц.В. Особенности влияния типов и концентраций цитокининов на этапе микроразмножения представителей рода Actinidia Lindl. Субтропическое и декоративное садоводство. 2023;(85):132-143. DOI: 10.31360/2225-3068-2023-85-132-144 EDN: GHCVAC
23. Мичурин И.В. Сочинения. Записные книжки и дневники. Т. 3. Москва; Ленинград: Сельхозгиз; 1940.
24. Митрофанова И.В. Прямая регенерация микропобегов из листовых дисков киви (Actinidia deliciosa (Chev.) Liang, Ferguson) в условиях in vitro. Iнтродукцiя рослин. 2000;(1):157-158.
25. Molkanova O., Krakhmaleva I., Kozak N. Genetic resources and features of clonal micropropagation of Far Eastern species of Actinidia. In: BIO Web of Conferences. Dedicated to the 101st anniversary of the discovery of the law of homological series and the 134th anniversary of the birth of N.I. Vavilov; 2021 November 25-26; Saratov, Russia. Vol. 43. Saratov; 2022. DOI: 10.1051/bioconf/20224303021
26. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia plantarum. 1962;15(3):473-497. DOI: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
27. Ogihara Y. Tissue culture in Haworthia: Part 4: genetic characterization of plants regenerated from callus. Theoretical and Applied Genetics. 1981;60(6):353-363. DOI: 10.1007/BF00264330
28. Oliveira M.M., Fraser L.G. Actinidia spp. Kiwifruit. In: R.E. Litz (ed.). Biotechnology of fruit and nut crops. Wallingford, UK: CAB Publishing; 2005. p.1-27.
29. Об утверждении Доктрины продовольственной безопасности Российской Федерации. Указ Президента Российской Федерации от 21 января 2020 г. №20. 2020. URL: http://www.kremlin.ru/acts/bank/45106 [дата обращения: 24.02.2026].
30. О Стратегии научно-технологического развития Российской Федерации. Указ Президента Российской Федерации от 28 февраля 2024 г. № 145. 2024. URL: http://www.kremlin.ru/acts/bank/50358 [дата обращения: 24.02.2026].
31. Плеханова М.Н. Актинидия, лимонник, жимолость. Ленинград: Агропромиздат; 1990.
32. Плеханова М.Н. Зимостойкие сорта актинидии для северо-западного района нечерноземной зоны РСФСР. Научно-технический бюллетень Всесоюзного научно-исследовательского института растениеводства им. Н.И. Вавилова. 1983;(127):58-61.
33. Рахмангулов Р.С. Применение системы CRISPR/Cas для редактирования генов декоративных культур. Биотехнология и селекция растений. 2022;5(3):33-41. DOI: 10.30901/2658-6266-2022-3-o1 EDN: LCKCOL
34. Рахмангулов Р.С., Барабанов И.В., Ерастенкова М.В., Иванов А.А., Коваленко Т.М., Межина К.М., Петросян И.А., Харченко А.А., Шаймарданов Д.Ю., Шаймарданова Э.Х., Анисимова И.Н., Тихонова Н.Г., Ухатова Ю.В., Хлесткина Е.К. Новые направления в генетике, селекции, биотехнологии декоративных и ягодных культур в ВИР им. Н.И. Вавилова. Биотехнология и селекция растений. 2022;5(4):65-78. DOI: 10.30901/2658-6266-2022-4-o3 EDN: GRLNFU
35. Рахмангулов Р.С., Маляровская В.И., Самарина Л.С., Конинская Н.Г. К вопросу стерилизации эксплантов древесных и плодовых культур при введении в условия in vitro. Субтропическое и декоративное садоводство. 2018;(64):116-120. EDN: XRVOZV
36. Рахмангулов Р.С., Тихонова Н.Г. Селекция декоративных растений в России. Биотехнология и селекция растений. 2021;4(4):40-54. DOI: 10.30901/2658-6266-2021-4-o4 EDN: TEQPLO
37. Рахматуллина С.Р., Федяев В.В., Талипов Р.Ф., Рахманкулова З.Ф. Влияние препарата рифтал на морфофизиологические параметры проростков пшеницы при нормальном и дефицитном минеральном питании. Агрохимия. 2007;(5):42-48. EDN: IARDBZ
38. Revilla M.A. Power J.B. Morpho-genetic potential of long-term callus cultures of Actinidia deliciosa. The Journal of Horticultural Sciences. 1988;63:541-545.
39. Рындин А.В., Тутберидзе Ц.В., Гребенюков С.Н., Грязев В.А. Вегетативное размножение Actinidia deliciosa в условиях субтропиков России при применении стимуляторов роста. Сельскохозяйственная биология. 2014;49(3):59-69. EDN: SHAWPR
40. Samarina L.S., Gvasaliya M.V., Koninskaya N.G., Rakhmangulov R.S., Efremov A., Kiselyova N., Ryndin A.V., Hanke M.-V. A comparison of genetic stability in tea [Camellia sinensis (L.) Kuntze] plantlets derived from callus with plantlets from long-term in vitro propagation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2019;138(3):467-474.
41. Скапцов М.В., Белкин Д.Л., Смирнов С.В., Куцев М.Г. Сомаклональная изменчивость девясила британского - Inula britannica L. в культуре in vitro. Turczaninowia. 2015;18(4):41-48. DOI: 10.14258/turczaninowia.18.4.5 EDN: VFJDID
42. Скапцов М.В., Куцев М.Г. Изменения кариотипа Rumex acetosa L. в культуре in vitro на фоне явления сомаклональной изменчивости. Известия алтайского государственного университета. 2012;3(2):57-59. EDN: PMDMGB
43. Стрыгина К.В., Хлесткина Е.К. Редактирование генов пшеницы, ячменя и кукурузы с использованием системы CRISPR/Cas. Биотехнология и селекция растений. 2020;3(1):46-56. DOI: 10.30901/2658-6266-2020-1-o2 EDN: NDGZTX
44. Талипов Р.Ф., Гайсин А.М., Сафаров М.Г., Сафиуллина З.Н., Рахманкулов Д.Л., Зорин В.В., Мусавиров Р.С., Базунова Г.Г. Стимулятор роста растений: Патент на изобретение RU 2127053 C1, 10.03.1999. Заявка №95117735/04 от 18.10.1995. URL: https://patents.google.com/patent/RU2127053C1/ru [дата обращения: 13.10.2025].
45. Тарасенко В.И. Возделывание киви в России. Санкт-Петербург: ВИР; 1999.
46. Тихонова Н.Г., Хлесткина Е.К. Генетическое редактирование для улучшения плодовых и ягодных культур. Садоводство и виноградарство. 2019;(44):10-15. DOI: 10.31676/0235-2591-2019-4-10-15 EDN: SEDBIE
47. Тутберидзе Ц.В. Рост и развитие сортов киви в субтропиках России. Субтропическое и декоративное садоводство. 2004;(39-2):474-486. EDN: TUHWKB
48. Тутберидзе Ц.В., Беседина Т.Д., Добежина С.В. Оценка адаптивного потенциала сортов Actinidia deliciosa (киви) в субтропиках России. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2012;(80):47-58. URL: download/elibrary_17904327_89301736.pdf [дата обращения: 24.02.2026]. EDN: PBUUXP
49. Ухатова Ю.В., Ерастенкова М.В., Коршикова Е.С., Крылова Е.А., Михайлова А.С., Семилет Т.В., Тихонова Н.Г., Швачко Н.А., Хлесткина Е.К. Улучшение культурных растений при помощи системы CRISPR/Cas: новые гены-мишени. Молекулярная биология. 2023;57(3):387-410. DOI: 10.31857/S0026898423030151
50. Wang T., Atkinson R., Janssen B. The choice of agrobacterium strain for transformation of kiwifruit. Acta Horticulturae. 2007;(753):227-232. DOI: 10.17660/ActaHortic.2007.753.26
51. Ямалеева А.А., Талипов Р.Ф., Ибрагимов Р.И., Сакаева А.Г. Исследование действия рифтала на фракционный состав белков семян и оптические свойства ХБК растений. Вестник Башкирского университета. 2004;9(3):96-99. EDN: PXYQER
52. Юдина Р.С., Гордеева Е.И., Шоева О.Ю., Тихонова М.А., Хлесткина Е.К. Антоцианы как компоненты функционального питания. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021;25(2):178-189.

Выпуск

№ 1, Том 9 (2026)

Кол-во страниц: 69 страниц

Другие статьи выпуска

БИОЛОГИЧЕСКИЕ КОЛЛЕКЦИИ ДЛЯ ЗДОРОВЬЯ И ДОЛГОЛЕТИЯ: ТРЕНДЫ В ИСПОЛЬЗОВАНИИ ГЕНЕТИЧЕСКИХ РЕСУРСОВ РАСТЕНИЙ (2026)

Авторы: Хлесткина Е. К.

Изучение коллекций генетических ресурсов привело к разработке современных методов биотехнологии. В наше время в условиях накопления больших геномных и омиксных данных биологические коллекции имеют огромное значение для развития персонализированных подходов в медицине и питании. Междисциплинарные комплексные исследования в области здорового питания, базируясь на классической нутрициологии и диетологии, охватывают сегодня нутриогеномику человека с применением омиксных подходов, нутрициологические и нутриогеномные эксперименты на модельных животных, нутрициологическое фенотипирование генетических ресурсов растений наряду с их биохимическим и метаболомным анализом, а также наукоемкие способы переработки растительного сырья. Подчеркивается, что такой комплексный подход не только является основой важных разработок в сфере персонализированного питания, но и создает перспективу персонализированной селекции растений для рациона человека. Делается акцент на изучении генетических ресурсов культурных растений с геропротекторными свойствами и на значимости биофортификации сортов растений, из которых производят повседневные продукты питания.

Сохранить в закладках

Криоконсервация российских сортов малины и их долгосрочное хранение в криобанке ВИР (2026)

Авторы: Дунаева С. Е., Малышев Л. Л., Лисицына О. В., Гавриленко Т. А.

Криоконсервация является эффективным методом долгосрочного сохранения образцов растений. Криоколлекции образцов рода Rubus представлены в единичных зарубежных генбанках, в которых сортов малины российской селекции практически нет. Подавляющее число работ по криоконсервации образцов рода Rubus основано на использовании в качестве эксплантов апексов in vitro растений. Коллекция in vitro образцов рода Rubus в Федеральном исследовательском центре Всероссийском институте генетических ресурсов растений имени Н. И. Вавилова (ВИР) включает 160 образцов, в их числе 79 отечественных селекционных сортов малины. Образцы малины из in vitro коллекции закладываются на долгосрочное хранение в криобанк ВИР с 2017 года. Задача данной работы заключалась в криоконсервации и закладке на длительное хранение 11 российских сортов из in vitro коллекции ВИР и обобщении данных обо всей криоколлекции сортов малины Rubus idaeus L., включающей в настоящее время 27 образцов, хранящихся в криобанке ВИР. Материалы и методы. Образцы современных сортов малины, полученные из пяти российских селекцентров, были введены в коллекцию in vitro ВИР. Криоконсервацию апексов микрорастений проводили модифицированным в ВИР методом дроплет-витрификации. Для статистической обработки данных использовали дисперсионный анализ и анализ главных компонент. Результаты и обсуждение. В культуру in vitro были введены 11 сортов малины российской селекции для которых была проведена криоконсервация. Показатели посткриогенной регенерации у этих образцов варьировали от 27 до 65%. В настоящее время вся криоколлекция сортов малины, сохраняемая в криобанке ВИР, насчитывает 27 сортов с показателями посткриогенной регенерации, варьирующими от 24 до 89%. С помощью анализа главных компонент криоколлекция была разделена на группы сортов по их реакции на погружение в жидкий азот в контрольных экспериментах. Заключение. Криоколлекция образцов малины, хранящаяся в криобанке ВИР, была пополнена 11 сортами. В настоящее время состав криоколлекции включает 23 селекционных сорта и четыре сорта народной селекции. Все 27 сортов были заложены на долгосрочное хранение в криобанк ВИР из расчета как минимум 90 эксплантов на образец.

Сохранить в закладках

Оценка эффективности маркеров S-локуса для выявления самофертильных форм на материале коллекции косточковых культур Майкопской опытной станции – филиала ВИР (2026)

Авторы: Макаов А. К., Радченко О. Е., Яремкив А. И., Антонова О. Ю.

S-локус, контролирующий систему гаметофитной несовместимости у видов семейства Розовые, отличается высокой степенью аллельного разнообразия, которое с успехом используется для S-генотипирования и молекулярной паспортизации, а также для уточнения филогенетических взаимоотношений между видами. В практическом плане изучение S-локуса важно также для выявления мутантных аллелей, приводящих к самофертильности. Недавно у сливы домашней Prunus domestica L. была установлена ассоциация данного признака с присутствием в геноме аллеля S17, и были разработаны специфичные праймеры для его идентификации. Целью нашей работы было выявление маркеров данного аллеля в выборке образцов коллекций косточковых, поддерживаемых на Майкопской опытной станции – филиале ВИР и НПБ «Пушкинские и Павловские лаборатории ВИР», а также определение их эффективности в параллельном фенотипическом анализе. Материалы и методы. Молекулярный скрининг проводили с использованием праймеров, специфичных для аллеля S17, и консенсусных праймеров PruC2/PCER. Параллельно в течение двух лет (2024 и 2025 годов) образцы сливы и алычи были фенотипированы по признаку самофертильности с использованием методики, принятой в ВИР. Результаты и обсуждение. Изучена выборка из 266 образцов косточковых культур коллекции Майкопской опытной станции, из них 76 образцов алычи Prunus cerasifera Ehrh., 150 образцов сливы домашней P. domestica, один образец сливы североамериканской Prunus americana Marsh., один образец сливы канадской Prunus nigra Aiton, три образца сливы русской Prunus× rossica Erem. и 35 образцов терна Prunus spinosa L. Выявлено 16 образцов – носителей аллеля S17. Параллельно в течение двух сезонов (2024 и 2025 годов) для значительной части выборки, 124 образцов алычи и сливы домашней, оценили способность растений формировать плоды при опылении собственной пыльцой. Число самофертильных образцов у гексаплоидной сливы домашней составило 56,1%, а у алычи – только 5,9%. Данные результаты полностью согласуются с описанным в литературе явлением широкого распространения самофертильных форм среди полиплоидных организмов. При этом большинство самофертильных образцов не имели аллеля S17, то есть их самоплодность должна объясняться какими-то другими причинами. С другой стороны, почти все образцы сливы домашней с аллелем S17 оказались самофертильными. Заключение. Сопоставление результатов молекулярного скрининга и фенотипического анализа показало, что аллель S17 у сливы домашней действительно проявляет ассоциацию со свойством самосовместимости, однако у P. domestica должны существовать и другие мутантные варианты, приводящие к нарушению механизмов деградации собственных пыльцевых трубок. У диплоидной алычи такой ассоциации не наблюдается. Выявленные в процессе анализа самофертильные образцы с маркерами аллеля S17, представляют большой интерес для селекции, поскольку их можно непосредственно использовать в маркер-вспомогательном отборе.

Сохранить в закладках

Комплексная оценка устойчивости сортов яровой мягкой пшеницы татарстанской селекции к бурой ржавчине с использованием молекулярно-генетических и полевых методов (2026)

Авторы: Костенко В. В., Баранова Н. Б., Асхадуллин Д. Ф., Асхадуллин Д. Ф., Пономарева М. Л.

Бурая ржавчина Puccinia triticina Eriks. мягкой пшеницы является одной из наиболее вредоносных болезней в условиях умеренного климата Российской Федерации, вызывая значительные потери урожая и снижение качества зерна. В связи с этим актуальной задачей является оценка устойчивости сортов и разнообразия Lr-генов у татарстанских сортов пшеницы. Наибольший интерес представляют гены Lr9, Lr19, Lr24, Lr26, Lr34, Lr37/Yr17/Sr38 и Lr46, обеспечивающие устойчивость на различных стадиях развития растений. Целью исследования являлась комплексная оценка устойчивости к бурой ржавчине сортов яровой мягкой пшеницы татарстанской селекции с использованием полевых и молекулярно-генетических методов. Материалы и методы. Устойчивость 15 сортов оценивали в полевых условиях в 2023-2025 годах на экспериментальной базе Татарского НИИСХ ФИЦ КазНЦ РАН по степени поражения флагового и предфлагового листьев. Идентификацию генов устойчивости проводили с использованием диагностических ДНК-маркеров, ассоциированных с шестью Lr-генами. Результаты и обсуждение. Наиболее устойчивыми в полевых условиях оказались сорта ‘Наставник’, ‘Хазинэ’ и ‘Чистопольская’, характеризующиеся наличием комбинаций Lr9+Lr24+Lr46, Lr19+Lr24 и Lr9+Lr24+Lr34 соответственно. Средний уровень устойчивости (индекс устойчивости 0,4-0,6) в эпифитотийный год имели сорта ‘Аль Варис’, ‘Балкыш’, ‘Буляк’ и ‘Сакара’. Показано, что высокая и долговременная устойчивость формируется за счёт сочетания расоспецифичных и возрастных генов. Полученные данные указывают на различия в информативности и специфичности молекулярных маркеров, использованных для оценки устойчивости сортов. Заключение. Проявление устойчивости в полевых условиях определяется генетическим фоном сорта, агроклиматическими условиями и расовым составом возбудителя. Результаты исследования могут быть использованы для целенаправленного отбора исходного материала и реализации стратегии пирамидирования генов устойчивости в селекционных программах яровой пшеницы.

Сохранить в закладках

Питательная ценность образцов Vigna unguiculata (L.) Walp. с разным цветом семян (2026)

Авторы: Попов В. С., Никифоров А. А., Сафонова Э. Э., Шеленга Т. В., Крылова Е. А., Бурляева М. О.

Вигна китайская Vigna unguiculata (L.) Walp. издавна культивируется в Африке, юго-восточной Азии и Америке. Семена V. unguiculata известны своими вкусовыми качествами и содержат высокое количество белков, углеводов, макро- и микроэлементов, биологически активных соединений. Отмечаются антиоксидантные, антиканцерогенные и антибактериальные свойства культуры. Продукты, приготовленные из семян и бобов V. unguiculata, обладают диетической ценностью и входят в рационы питания людей, заботящихся о своем здоровье. Целью работы являлось определение питательной ценности образцов V. unguiculata из коллекции ВИР разного эколого-географического происхождения и имеющих разную окраску семенной кожуры. Материалы и методы. Для исследования были подобраны 39 образцов из коллекции ВИР. Изучали содержание белка, крахмала, антоцианов, каротиноидов, β-каротина и хлорофиллов в семенах. Количество антоцианов в семенах определяли в спиртовых экстрактах спектрофотометрическим методом, белка – по Кьельдалю, крахмала – по Эверсу, хлорофиллы, каротиноиды и β-каротин – спектрофотометрическим методом. Результаты. Диапазон варьирования количества антоцианов в семенах достаточно широк: от 1,8 до 404,4 мг%. Наиболее высокие показатели отмечены у семян с чёрной окраской (124,3-404,4 мг%), меньшие – у белосемянных (1,8-3,9 мг%). Содержание общего белка находилось в пределах 18,8-30,5%, крахмала – 42,6-57,1%, хлорофиллов a и b – от 0,13 до 3,7 мг%. Каротиноиды и β-каротин обнаружены в минимальных количествах: 0,07- 0,72 мг% и 0,01-0,14 мг% соответственно. Заключение. В нашем опыте содержание антоциана в семенах влияло на цвет семенной кожуры, но не оказывало воздействие на показатели белка, крахмала, каротиноидов и β-каротина. Также наблюдалась достоверная ассоциация между содержанием каротиноидов в семенах и эколого-географическим происхождение образца. Выявлена положительные корреляции (r>0,8) между содержанием хлорофиллов и β-каротина, между β-каротином и каротиноидами, отрицательная – между содержанием крахмала и белка (r= –0,81). Лучшую питательную ценность по комплексу изученных признаков имели образцы к-1738 ‘Сибирский размер’ (Россия) и к-567 (Индия).

Сохранить в закладках

ВСТУПИТЕЛЬНАЯ СТАТЬЯ (2026)

Авторы: Хлесткина Е. К.

Уважаемые читатели!

Сохранить в закладках

Издательство

Издательство: ВИР
Регион: Россия, Санкт-Петербург
Почтовый адрес: Санкт-Петербург, ул.Большая Морская, 42, 44
Юр. адрес: Санкт-Петербург, ул.Большая Морская, 42, 44
ФИО: Хлесткина Елена Константиновна (Директор)
E-mail адрес: secretary@vir.nw.ru
Контактный телефон: +7 (812) 3125161
Сайт: https://www.vir.nw.ru/

Все права на тексты и товарные знаки принадлежат их законным владельцам. Подробнее...

Сайт https://sci.ru (далее – сайт) работает по принципу агрегатора – собирает и структурирует информацию из публичных источников в сети Интернет, то есть передает полнотекстовую информацию о товарных знаках в том виде, в котором она содержится в открытом доступе.

Сайт и администрация сайта не используют отображаемые на сайте товарные знаки в коммерческих и рекламных целях, не декларируют своего участия в процессе их государственной регистрации, не заявляют о своих исключительных правах на товарные знаки, а также не гарантируют точность, полноту и достоверность информации.

Все права на товарные знаки принадлежат их законным владельцам!

Сайт носит исключительно информационный характер, и предоставляемые им сведения являются открытыми публичными данными.

Администрация сайта не несет ответственность за какие бы то ни было убытки, возникающие в результате доступа и использования сайта.

Спасибо, понятно.

Сказать «Спасибо»

Вы можете поблагодарить автора за публикацию. Ему (ей) будет приятно.

Наведите камеру на QR-код, чтобы открыть моб. версию страницы.