Научная статья: ДЛИТЕЛЬНОСТЬ ИСКУССТВЕННОЙ ВЕНТИЛЯЦИИ ЛЕГКИХ У БОЛЬНЫХ С ОСТРЫМ РЕСПИРАТОРНЫМ ДИСТРЕСССИНДРОМОМ ПРИ РАЗНОТИПНЫХ СТРАТЕГИЯХ ПИТАНИЯ (СООБЩЕНИЕ 2) (2026) (читать, скачать)

Читать онлайн

Цель исследования — мониторинг длительности искусственной вентиляции легких (ИВЛ) и составляющих ее режимов, а также исходов у больных с тяжелым респираторным дистресс-синдромом (ОРДС) при разнотипных стратегиях питания.

Материалы и методы. Больные с ОРДС (158 человек) были разделены на две группы исходя из стратегии питания. Анализировались длительность ИВЛ в разных режимах и исходы при использовании разных стратегий питания. Осуществлялся статистический анализ.

Результаты. Все стратегии питания позитивно изменяли индекс оксигенации (ИО). Между группами не идентифицировалось достоверных различий по летальности. Выявлено уменьшение длительности ИВЛ у больных с энтеральным питание относительно пациентов с парентеральным и смешанным. Обнаружена меньшая длительность режима СMV при энтеральном питании по сравнению с пациентами с парентеральным и смешанным питанием. Диабетическое энтеральное питание способствовало снижению продолжительности режима PSV и BIPAP по сравнению с пациентами, получавших парентеральное и смешанное питание.

Выводы. Приоритетной стратегией лечебного питания у больных с тяжелым ОРДС является энтеральная, которая уменьшает продолжительность общей ИВЛ и ее режимов, по сравнению с другими вариантами нутритивной поддержки.

Диабетическое питание имеет преимущество перед иммунным при осуществлении энтеральной стратегии, так как уменьшает длительность режима BIPAP.

Энтеральное иммунное питание по отношению к смешанным схемам нутритивной поддержки способствует меньшей длительности общей ИВЛ и режима CMV, но не имеет преимуществ по продолжительности режимов PSV и BIPAP.

Смешанное питание по сравнению с парентеральным сокращает длительность общей ИВЛ, а также режимов CMV, PSV и BIPAP.

Парентеральное питание у больных с тяжелым ОРДС является наименее выгодной стратегией в отношении других схем нутритивного лечения. Все стратегии питания положительно реформируют ИО без значимого преимущества.

Не раскрыта стратегия питания, содействующая сокращению летальности при тяжелом ОРДС.

Ключевые фразы: искусственная вентиляция легких, питательная под- держка

Автор (ы): Гирш Андрей Оттович (Girsh A. O.), Клементьев Алексей Владимирович (Klementev A. V.), Степанов Сергей Степанович (Stepanov S. S.), МИЩЕНКО С.В. (MISCHENKO S.V.), Щетина Александр Владимирович (SCHetina A. V.), Измайлова Наталья Александровна (Izmaylova N. A.), Черненко Сергей Владимирович (CHernenko S. V.), Суздальцев Андрей Муратович (Suzdaltsev A. M.)

Журнал: ПОЛИТРАВМА

Предпросмотр статьи

Идентификаторы и классификаторы

SCI: Клиническая медицина
УДК: 61. Медицина. Охрана здоровья. Пожарное дело

Для цитирования:

ГИРШ А. О., КЛЕМЕНТЬЕВ А. В., СТЕПАНОВ С. С., МИЩЕНКО С.В., ЩЕТИНА А. В., ИЗМАЙЛОВА Н. А., ЧЕРНЕНКО С. В., СУЗДАЛЬЦЕВ А. М. ДЛИТЕЛЬНОСТЬ ИСКУССТВЕННОЙ ВЕНТИЛЯЦИИ ЛЕГКИХ У БОЛЬНЫХ С ОСТРЫМ РЕСПИРАТОРНЫМ ДИСТРЕСССИНДРОМОМ ПРИ РАЗНОТИПНЫХ СТРАТЕГИЯХ ПИТАНИЯ (СООБЩЕНИЕ 2) // ПОЛИТРАВМА. 2026. № 1

Текстовый фрагмент статьи

Моя история просмотров (2)

01. Книга: Восприятие, сознание, память. Размышления биолога.

02. Статья: ПИФАГОРЕЙСКАЯ РЕВОЛЮЦИЯ ГЕЙЗЕНБЕРГА: ОТ КВАНТОВЫХ СКАЧКОВ К МАТРИЧНОЙ АЛГЕБРЕ И ДАЛЕЕ

Будьте первым, кто начнет обсуждение

Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.

Создать тему для обсуждения

Список литературы

1. Максимишин С. В., Гирш А. О.,Степанов С. С., Стуканов М. М., Малюк А. И., Еселевич Р. В., и др. Время возникновения белково-энергетической недостаточности у больных с острым респираторным дистресс-синдромом // Забайкальский медицинский вестник. 2020. № 4. С. 90-95.
2. Гирш А. О., Мищенко С. В., Степанов С. С.,Клементьев А. В., Лейдерман И. Н., Стуканов М. М., и др. Дисфункции органов и систем у больных с острым респираторным дистресс-синдромом // Политравма. 2022. № 2. С. 18-25.
3. Гирш А. О., Мищенко С. В., Степанов С. С., Клементьев А. В., Черненко С. В., Крестникова Е. Н. Вариабельность питательной недостаточности у пациентов с острым респираторным дистресс-синдромом различной степени тяжести (Сообщение 2) // Политравма. 2023. № 1. С. 17-24.
4. Гирш А. О., Мищенко С. В., Степанов С. С., Клементьев А. В., Черненко С. В., Малюк А. И., и др. Эволюция гликемии и триглицеридемии у пациентов с острым респираторным дистресс-синдромом при разноплановой нутритивной терапии (Сообщение 2) // Политравма. 2023. № 3. С. 16-28.
5. Zhou K, Qin C, Lu J. Pathophysiological mechanisms of ARDS: a review in terms of molecular and organ levels. Respir Res. 2025; 26: 54-66.
6. Bos LDJ, Ware LB. Acute respiratory distress syndrome: causes, pathophysiology, and phenotypes. The Lancet. 2022; 400: 1145-1156.
7. Nakamura K, Yamamoto R, Higashibeppu N, Yoshida M, Tatsumi H, Shimizu Y, et al. The Japanese critical care nutrition guideline 2024. J Intensive Care. 2025;13(1):18. DOI: 10.1186/s40560-025-00785-z
8. Rizzo AN, Haeger SM, Oshima K, Yang Y, Wallbank AM, Jin Y, et al. Alveolar epithelial glycocalyx degradation mediates surfactant dysfunction and contributes to acute respiratory distress syndrome. JCI Insight. 2022;7(2):e154573. 10.1172/jci.insight. 154573. DOI: 10.1172/jci.insight.154573
9. Петриков С. С., Хубутия М. Ш., Попова Т. С., Свиридов С. В., Шестопалов А. Е., Луфт В. М. и др. Парентеральное и энтеральное питание: национальное руководство. 2-е изд., перераб. и доп.Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2023. 1168 с. DOI: 10.33029/9704-7277-4-PAR-2023-1-1168
10. Грицан А. И., Ярошецкий А. И., Авдеев С.Н., и др. Диагностика и интенсивная терапия острого респираторного дистресс-синдрома. Клинические рекомендации Общероссийской общественной организации Федерация анестезиологов и реаниматологов. 2015. Электронный документ: http://far.org.ru/recomendation. ▼ Контекст
11. Ярошецкий А. И., Грицан А. И., Авдеев С. Н., Власенко А. В., Еременко А. А., Заболотских И. Б. и др. Диагностика и интенсивная терапия острого респираторного дистресс-синдрома. Клинические рекомендации. Общероссийской общественной организации Федерация анестезиологов и реаниматологов. 2020.Электронный документ: http://far.org.ru/recomendation. ▼ Контекст
12. Ярошецкий А. И., Грицан А. И., Авдеев С. Н., и др. Диагностика и интенсивная терапия острого респираторного дистресс-синдрома. Клинические рекомендации Общероссийской общественной организации Федерация анестезиологов и реаниматологов. 2023. Электронный документ: http://far.org.ru/recomendation. ▼ Контекст
13. Лейдерман И. Н., Грицан А. И., Заболотских И. Б., Лебединский К. М., Крылов К. Ю., Мазурок В. А. и др. Метаболический мониторинг и нутритивная поддержка при проведении длительной искусственной вентиляции легких. Методические рекомендации Общероссийской общественной организации “Федерация анестезиологов и реаниматологов” // Анестезиология и реаниматология. 2022. № 5. С. 6-17. EDN: YBDERD ▼ Контекст
14. Интенсивная терапия: национальное руководство / под редакцией И. Б. Заболотских, Д.Н. Проценко. 2-е издание, переработанное и дополненное. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2021. 2208 с. ▼ Контекст
15. Wilson B, Typpo K. Nutrition: a primary therapy in pediatric acute respiratory distress syndrome. Front. Pediatr. 2016; 4:108. ▼ Контекст
16. Grotberg JC, Reynolds D, Kraft BD. Management of severe acute respiratory distress syndrome: a primer. Crit. Care. 2023; 27: 289. EDN: VQYVVR ▼ Контекст
17. Constantin JM, Jabaudon M, Lefrant JY, Jaber S, Quenot JP, Langeron O, et al. Personalised mechanical ventilation tailored to lung morphology versus low positive end-expiratory pressure for patients with acute respiratory distress syndrome in France (the LIVE study): a multicentre, single-blind, randomised controlled trial. Lancet Respir Med. 2019;7(10):870-880. DOI: 10.1016/S2213-2600(19)30138-9 ▼ Контекст
18. Fujishima S. Guideline-based management of acute respiratory failure and acute respiratory distress syndrome. J.intensive care. 2023; 11: 10. EDN: UHYNNQ ▼ Контекст
19. Goligher EC, Dres M, Fan E, Rubenfeld GD, Scales DC, Herridge MS, et al. Mechanical ventilation-induced diaphragm atrophy strongly impacts clinical outcomes. Am J Respir Crit Care Med. 2018;197(2):204-213. DOI: 10.1164/rccm.201703-0536OC ▼ Контекст
20. Aoyama H, Uchida K, Aoyama K, Pechlivanoglou P, Englesakis M, Yamada Y, et al. Assessment of therapeutic interventions and lung protective ventilation in patients with moderate to severe acute respiratory distress syndrome: a systematic review and network meta-analysis. JAMA Netw Open. 2019;2(7):e198116. 10.1001/ jamanetworkopen.2019.8116. DOI: 10.1001/jamanetworkopen.2019.8116 ▼ Контекст
21. Ohshimo S. Oxygen administration for patients with ARDS. J.intensive care. 2021; 9: 17. ▼ Контекст
22. Искусственная вентиляция легких у взрослых пациентов с острым респираторным дистресс-синдромом. Официальные клинические рекомендации Американского торакального общества, Европейского общества интенсивной терапии и Общества критических состояний в медицине // Пульмонология. 2018. Т.28, № 4. С. 399-410. DOI: 10.1164/rccm.201703-0548ST EDN: YLLEBF ▼ Контекст
23. Singh RK, Saran S, Baronia AK. The practice of tracheostomy decannulation- a systematic review. J.intensive care. 2017; 5: 38. EDN: ZJMGDU ▼ Контекст
24. Гирш А. О., Мищенко С. В., Степанов С. С., Клементьев А. В., Лейдерман И. Н., Стуканов М. М. и др. Соотнесенность синдромов полиорганной недостаточности и гиперметаболизма у пациентов с острым респираторным дистресс-синдромом различной степени тяжести при реализации разноплановой питательной поддержки // Политравма. 2022. №3. С. 6-15. EDN: XMJFLU ▼ Контекст
25. Carvalho EB, Leite TRS, Sacramento RFM, Nascimento PRLD, Samary CDS, Rocco PRM, et al. Rationale and limitations of the SpO2/ FiO2 as a possible substitute for PaO2/FiO2 in different preclinical and clinical scenarios. Rev Bras Ter Intensiva. 2022;34(1):185-196. DOI: 10.5935/0103-507X.20220013-pt EDN: HILIPH ▼ Контекст
26. Wick KD, Matthay MA, Ware LB. Pulse oximetry for the diagnosis and management of acute respiratory distress syndrome. Lancet Respir Med. 2022; 10 (11): 1086-1098. EDN: KGTQKZ ▼ Контекст
27. Боровиков В. П. Популярное введение в современный анализ данных в системе STATISTICA. Москва: Горячая линия - Телеком, 2013. 288 с. EDN: SDSJFB
28. Wang Y, Li Y, Li N, Li Y, Li H, Zhang D. Protective nutrition strategy in the acute phase of critical illness: why, what and how to protect. Front Nutr. 2025;12:1555311. DOI: 10.3389/fnut.2025.1555311 EDN: JODRAI ▼ Контекст
29. A.S.P.E.N. Clinical guidelines: nutrition support of adult patients with hyperglycemia. Journal of Parenteral and Enteral Nutrition. 2013; 1 (37): 23-36. ▼ Контекст
30. van Gassel RJJ, Baggerman MR, van de Poll MCG. Metabolic aspects of muscle wasting during critical illness. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2020; 23 (2): 96-101. EDN: ZSDWXW ▼ Контекст
31. Kim TJ, Park SH, Jeong HB, Ha EJ, Cho WS, Kang HS, et al. Optimizing nitrogen balance is associated with better outcomes in neurocritically ill patients. Nutrients. 2020;12(10):3137. DOI: 10.3390/nu12103137 EDN: BVQJIY ▼ Контекст
32. Files DC, Sanchez MA, Morris PE. A conceptual framework: the early and late phases of skeletal muscle dysfunction in the acute respiratory distress syndrome. Crit Care. 2015; 19: 266. EDN: VXJISV ▼ Контекст
33. Bonaldo P, Sandri M. Cellular and molecular mechanisms of muscle atrophy. Dis Model Mech. 2013; 6: 25-39. EDN: RHYIQR ▼ Контекст
34. Wing SS, Lecker SH, Jagoe RT. Proteolysis in illness-associated skeletal muscle atrophy: from pathways to networks. Crit Rev Clin Lab Sci. 2011; 48: 49-70. ▼ Контекст
35. Puthucheary ZA, Rawal J, McPhail M, Connolly B, Ratnayake G, Chan P, et al. Acute skeletal muscle wasting in critical illness. JAMA. 2013;310(15):1591-600. DOI: 10.1001/jama.2013.278481 ▼ Контекст
36. Li YP, Chen Y, John J, Moylan J, Jin B, Mann DL, Reid MB. TNF-alpha acts via p38 MAPK to stimulate expression of the ubiquitin ligase atrogin1/MAFbx in skeletal muscle. FASEB J. 2005;19(3):362-370. DOI: 10.1096/fj.04-2364com ▼ Контекст
37. Li YP, Lecker SH, Chen Y, Waddell ID, Goldberg AL, Reid MB. TNFalpha increases ubiquitin-conjugating activity in skeletal muscle by up-regulating UbcH2/E220k. FASEB J. 2003;17(9):1048-1057. DOI: 10.1096/fj.02-0759com ▼ Контекст
38. Cai D, Frantz JD, Tawa NE Jr, Melendez PA, Oh BC, Lidov HG, et al. IKKbeta/NF-kappaB activation causes severe muscle wasting in mice. Cell. 2004;119(2):285-298. DOI: 10.1016/j.cell.2004.09.027 ▼ Контекст
39. Schulze PC, Gielen S, Adams V, Linke A, Möbius-Winkler S, Erbs S, et al. Muscular levels of proinflammatory cytokines correlate with a reduced expression of insulinlike growth factor-I in chronic heart failure. Basic Res Cardiol. 2003;98(4):267-274. 10.1007/ s00395-003-0411-1. DOI: 10.1007/s00395-003-0411-1 EDN: ESLFAT ▼ Контекст
40. Chapple LS, Kouw IWK, Summers MJ, Weinel LM, Gluck S, Raith E, et al. Muscle protein synthesis after protein administration in critical illness. Am J Respir Crit Care Med. 2022;206(6):740-749. 10.1164/ rccm.202112-2780OC. DOI: 10.1164/rccm.202112-2780OC EDN: TTDGYS ▼ Контекст
41. Singer P, Blaser AR, Berger MM, Calder PC, Casaer M, Hiesmayr M, et al. ESPEN practical and partially revised guideline: сlinical nutrition in the intensive care unit. Clin Nutr. 2023;42(9):1671-1689. DOI: 10.1016/j.clnu.2023.07.011 EDN: TQSVZO ▼ Контекст
42. Singer P, Blaser AR, Berger MM, Alhazzani W, Calder PC, Casaer MP, et al. ESPEN guideline on clinical nutrition in the intensive care unit. Clin Nutr. 2019;38(1):48-79. DOI: 10.1016/j.clnu.2018.08.037 EDN: WWXSZC ▼ Контекст
43. Weimann A, Braga M, Carli F, Higashiguchi T, Hübner M, Klek S, et al. ESPEN guideline: clinical nutrition in surgery. Clinical Nutrition. 2017; 36(3): 623-650. ▼ Контекст
44. Ullah H, Arbab S, Tian Y, Chen Y, Liu CQ, Li Q, et al. Crosstalk between gut microbiota and host immune system and its response to traumatic injury. Front Immunol. 2024;15:1413485. 10.3389/fimmu. 2024.1413485. DOI: 10.3389/fimmu.2024.1413485 EDN: MKQPDD ▼ Контекст
45. Sodhi CP, Jia H, Yamaguchi Y, Lu P, Good M, Egan C, et al.Intestinal epithelial TLR-4 activation is required for the development of acute lung injury after trauma/hemorrhagic shock via the release of HMGB1 from the gut. J Immunol. 2015;194(10):4931-4939. DOI: 10.4049/jimmunol.1402490 ▼ Контекст
46. Sertaridou E, Papaioannou V, Kolios G, Pneumatikos I. Gut failure in critical care: old school versus new school. Ann Gastroenterol. 2015;28(3):309-322. EDN: UQYIPL ▼ Контекст
47. Zhang DW, Lu JL, Dong BY, Fang MY, Xiong X, Qin XJ, et al. Gut microbiota and its metabolic products in acute respiratory distress syndrome. Front Immunol. 2024;15:1330021. 10.3389/fimmu. 2024.1330021. DOI: 10.3389/fimmu.2024.1330021 EDN: MVJRPM ▼ Контекст
48. Deitch E.A. Gut lymph and lymphatics: a source of factors leading to organ injury and dysfunction. Ann N Y Acad Sci. 2010; 1207 (1): 103-111. ▼ Контекст
49. Clark JA, Coopersmith CM.Intestinal crosstalk: a new paradigm for understanding the gut as the “motor” of critical illness. Shock. 2007; 28: 384-393. ▼ Контекст
50. Mittal R, Coopersmith CM. Redefining the gut as the motor of critical illness. Trends Mol Med. 2014; 20: 214-223. ▼ Контекст
51. Klingensmith NJ, Coopersmith CM. The gut as the motor of multiple organ dysfunction in critical illness. Crit Care Clin. 2016;32: 203-212. ▼ Контекст
52. Fukatsu K, Kudsk KA. Nutrition and gut immunity. Surg Clin North Am. 2011; 91: 755-770. ▼ Контекст
53. Marchiando AM, Graham WV, Turner JR. Epithelial barriers in homeostasis and disease. Annu Rev Pathol. 2010; 5: 119-144. EDN: NCAAIL ▼ Контекст
54. Luo H, Guo P, Zhou Q. Role of TLR4/NF-kappaB in damage to intestinal mucosa barrier function and bacterial translocation in rats exposed to hypoxia. PLoS One. 2012; 7: 46291. ▼ Контекст
55. Kudsk KA. Effect of route and type of nutrition on intestine-derived inflammatory responses. Am J Surg. 2003; 185: 16-21. ▼ Контекст
56. Samuelson DR, Welsh DA, Shellito JE. Regulation of lung immunity and host defense by the intestinal microbiota. Front Microbiol. 2015; 6: 1085. ▼ Контекст
57. Carmody RN, Gerber GK, Luevano JM Jr, Gatti DM, Somes L, Svenson KL, et al. Diet dominates host genotype in shaping the murine gut microbiota. Cell Host Microbe. 2015;17(1):72-84. 10.1016/j. chom.2014.11.010. DOI: 10.1016/j.chom.2014.11.010 ▼ Контекст
58. Krishnamurthy HK, Pereira M, Bosco J, George J, Jayaraman V, Krishna K, et al. Gut commensals and their metabolites in health and disease. Front Microbiol. 2023;14:1244293. 10.3389/ fmicb.2023.1244293. DOI: 10.3389/fmicb.2023.1244293 EDN: LILDZM ▼ Контекст
59. Мазурок В. А., Головкин А.С., Баутин А.Е., Горелов И. И., Беликов В. Л., Сливин О. А. Желудочно-кишечный тракт при критических состояниях: первый страдает, последний, кому уделяют внимание // Вестник интенсивной терапии. 2016. № 2. С. 28-37. EDN: WEZMHT ▼ Контекст
60. Zhang H, Wang Y, Sun S, Huang X, Tu G, Wang J, et al. Early enteral nutrition versus delayed enteral nutrition in patients with gastrointestinal bleeding: a PRISMA-compliant meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2019;98(11):e14864. DOI: 10.1097/MD.0000000000014864 ▼ Контекст
61. Rendon JL, Choudhry MA. Th17 cells: critical mediators of host responses to burn injury and sepsis. J Leukoc Biol. 2012; 92: 529-538. ▼ Контекст
62. Ichinohe T, Pang IK, Kumamoto Y, Peaper DR, Ho JH, Murray TS, et al. Microbiota regulates immune defense against respiratory tract influenza. A virus infection. Proc Natl Acad Sci USA. 2011; 108(13): 5354-5359. DOI: 10.1073/pnas.1019378108 ▼ Контекст
63. Galperin C, Gershwin ME. Immunopathogenesis of gastrointestinal and hepatobiliary diseases. JAMA. 1997; 278: 1946-1955. ▼ Контекст
64. Turner JR.Intestinal mucosal barrier function in health and disease. Nat Rev Immunol. 2009; 9: 799-809. EDN: NAAXVR ▼ Контекст
65. Seki H, Fukunaga K, Arita M, Arai H, Nakanishi H, Taguchi R, et al. The anti-inflammatory and proresolving mediator resolvin E1 protects mice from bacterial pneumonia and acute lung injury. J Immunol. 2010;184(2):836-843. DOI: 10.4049/jimmunol.0901809 ▼ Контекст
66. Eickmeier O, Seki H, Haworth O, Hilberath JN, Gao F, Uddin M, et al. Aspirin-triggered resolvin D1 reduces mucosal inflammation and promotes resolution in a murine model of acute lung injury. Mucosal Immunol. 2013;6(2):256-266. DOI: 10.1038/mi.2012.66 ▼ Контекст
67. Jacobs BR, Nadkarni V, Goldstein B, Checchia P, Ayad O, Bean J, et al. Nutritional immunomodulation in critically ill children with acute lung injury: feasibility and impact on circulating biomarkers. Pediatr Crit Care Med. 2013;14(1):e45-56. 10.1097/ PCC.0b013e31827124f3. DOI: 10.1097/PCC.0b013e31827124f3 ▼ Контекст
68. Evans L, Rhodes A, Alhazzani W, Antonelli M, Coopersmith CM, French C, et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock 2021.Intensive Care Med. 2021;47(11):1181-1247. DOI: 10.1007/s00134-021-06506-y EDN: QPJRSG ▼ Контекст
69. Mehta NM, Bechard LJ, Cahill N, Wang M, Day A, Duggan CP, et al. Nutritional practices and their relationship to clinical outcomes in critically ill children -an international multicenter cohort study. Crit Care Med. 2012;40(7):2204-2211. 10.1097/ CCM.0b013e31824e18a8. DOI: 10.1097/CCM.0b013e31824e18a8 ▼ Контекст
70. Mikhailov TA, Kuhn EM, Manzi J, Christensen M, Collins M, Brown AM, et al. Early enteral nutrition is associated with lower mortality in critically ill children. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2014;38(4):459-466. DOI: 10.1177/0148607113517903 ▼ Контекст
71. Shankar B, Daphnee DK, Ramakrishnan N, Venkataraman R. Feasibility, safety, and outcome of very early enteral nutrition in critically ill patients: Results of an observational study. J Crit Care. 2015;30(3):473-475. DOI: 10.1016/j.jcrc.2015.02.009 ▼ Контекст
72. Hegazi, R.A., Wischmeyer, P.E. Clinical review: optimizing enteral nutrition for critically ill patients - a simple data-driven formula. Crit Care. 2011; 5: Р. 234. EDN: SEVWFI ▼ Контекст
73. Suzuki Y, Kawasaki N, Urashima M, Suzuki Y, Kawasaki N, Urashima M, et al. Total enteral nutrition facilitates wound healing through preventing intestinal atrophy, keeping protein anabolism and suppressing inflammation. Gastroenterology Res. 2009;2(4):224-231. DOI: 10.4021/gr2009.08.1307 ▼ Контекст
74. Compher C, Bingham AL, McCall M, Patel J, Rice TW, Braunschweig C, et al. Guidelines for the provision of nutrition support therapy in the adult critically ill patient: the American Society for parenteral and enteral nutrition. J Parenter Enteral Nutr. 2022;46(1):12-41. DOI: 10.1002/jpen.2267 EDN: FUKXPQ ▼ Контекст
75. McClave SA, Martindale RG, Vanek VW, McCarthy M, Roberts P, Taylor B, et al. Guidelines for the provision and assessment of nutrition support therapy in the adult critically ill patient: Society of Critical Care Medicine (SCCM) and American Society for Parenteral and Enteral Nutrition (A.S.P.E.N.). J Parenter Enteral Nutr. 2009;33(3):277-316. DOI: 10.1177/0148607109335234 EDN: YVRUQB ▼ Контекст
76. Arvanitakis M, Ockenga J, Bezmarevic M, Gianotti L, Krznarić Ž, Lobo DN, et al. ESPEN guideline on clinical nutrition in acute and chronic pancreatitis. Clin Nutr. 2020;39(3):612-631. 10.1016/j. clnu.2020.01.004. DOI: 10.1016/j.clnu.2020.01.004 EDN: XBDYSW ▼ Контекст
77. Wischmeyer PE. Editorial: objective measurement of nutrition and metabolism in the ICU: the future of personalized metabolic therapy. Curr Opin Crit Care. 2021; 27 (4): 329-333. EDN: ANIAOB ▼ Контекст
78. van Zanten ARH, De Waele E, Wischmeyer PE. Nutrition therapy and critical illness: practical guidance for the ICU, post-ICU, and longterm convalescence phases. Crit Care. 2019; 23 (1): 368. ▼ Контекст
79. Reintam Blaser A, Starkopf J, Alhazzani W, Berger MM, Casaer MP, Deane AM, et al. Early enteral nutrition in critically ill patients: ESICM clinical practice guidelines.Intensive Care Med. 2017;43(3):380-398. DOI: 10.1007/s00134-016-4665-0 EDN: ZSQULF ▼ Контекст
80. Preiser JC, Arabi YM, Berger MM, Casaer M, McClave S, Montejo- González JC, et al. A guide to enteral nutrition in intensive care units: 10 expert tips for the daily practice. Crit Care. 2021;25(1):424. DOI: 10.1186/s13054-021-03847-4 EDN: YVKKQO ▼ Контекст
81. O’Keefe SJD, Graham T, Cote GA, Whitcomb DC, Evans A, et al. Devavrata soni early enteral feeding in severe acute pancreatitis: a randomized clinical trial between gastric vs distal jejunal feeding. Techniques and Innovations in Gastrointestinal Endoscopy. 2023; 25(4): 337-346. EDN: PPKVFQ ▼ Контекст
82. Czapran A, Headdon W, Deane AM, Lange K, Chapman MJ, Heyland DK.International observational study of nutritional support in mechanically ventilated patients following burn injury. Burns. 2015;41(3):510-518. DOI: 10.1016/j.burns.2014.09.013 ▼ Контекст
83. Peev MP, Yeh DD, Quraishi SA, Osler P, Chang Y, Gillis E, et al. Causes and consequences of interrupted enteral nutrition: a prospective observational study in critically ill surgical patients. J Parenter Enteral Nutr. 2015;39(1):21-27. DOI: 10.1177/0148607114526887 ▼ Контекст
84. Weijs PJ, Looijaard WG, Beishuizen A, Girbes AR, Oudemans-van Straaten HM. Early high protein intake is associated with low mortality and energy overfeeding with high mortality in non-septic mechanically ventilated critically ill patients. Crit Care. 2014;18(6):701. DOI: 10.1186/s13054-014-0701-z EDN: EYQOBQ ▼ Контекст
85. Ortiz-Reyes L, Patel JJ, Jiang X, Coz Yataco A, Day AG, Shah F, et al. Early versus delayed enteral nutrition in mechanically ventilated patients with circulatory shock: a nested cohort analysis of an international multicenter, pragmatic clinical trial. Crit Care. 2022;26(1):173. DOI: 10.1186/s13054-022-04047-4 EDN: QDXEJS ▼ Контекст
86. Kreymann KG, Berger MM, Deutz NE, Hiesmayr M, Jolliet P, Kazandjiev G, et al. ESPEN Guidelines on enteral nutrition: intensive care. Clin Nutr. 2006;25(2):210-223. DOI: 10.1016/j.clnu.2006.01.021 ▼ Контекст
87. Hill A, Heyland DK, Ortiz Reyes LA, Laaf E, Wendt S, Elke G, et al.Combination of enteral and parenteral nutrition in the acute phase of critical illness: an updated systematic review and meta-analysis. J Parenter Enteral Nutr. 2022;46(2):395-410. DOI: 10.1002/jpen.2125 EDN: SVQWMV ▼ Контекст
88. Günther A, Ruppert C, Schmidt R, Markart P, Grimminger F, Walmrath D, et al. Surfactant alteration and replacement in acute respiratory distress syndrome. Respir Res. 2001;2(6):353-364. DOI: 10.1186/rr86 EDN: ADAFNR ▼ Контекст
89. Dushianthan A, Cusack R, Goss V, Postle AD, Grocott MP. Clinical review: exogenous surfactant therapy for acute lung injury/acute respiratory distress syndrome-where do we go from here? Crit Care. 2012;16(6):238. DOI: 10.1186/cc11512 EDN: WCCXGH ▼ Контекст
90. Амигони А, Петтенаццо А, Стритони В, Чирчелли М. Препараты сурфактанта при остром респираторном дистресс-синдроме (респираторный дистресс взрослого типа) у детей: прошлое, настоящее и будущее // Неонатология: новости, мнения, обучение. 2018. Т.6, № 3. С. 32-40. EDN: YOFXNB ▼ Контекст
91. Розенберг О. А. Препараты легочного сурфактанта и сурфактант-терапия ОРДС в условиях хирургической реанимации (обзор литературы) // Креативная хирургия и онкология. 2019. № 9 (1). С. 50-65. EDN: WDBWDA ▼ Контекст
92. Braunschweig CA, Sheean PM, Peterson SJ, Gomez Perez S, Freels S, Lateef O, et al.Intensive nutrition in acute lung injury: a clinical trial (INTACT). J Parenter Enteral Nutr. 2015;39(1):13-20. DOI: 10.1177/0148607114528541 ▼ Контекст
93. Wischmeyer PE, Bear DE, Berger MM, De Waele E, Gunst J, McClave SA, et al. Personalized nutrition therapy in critical care: 10 expert recommendations. Crit Care. 2023;27(1):261. 10.1186/ s13054-023-04539-x. DOI: 10.1186/s13054-023-04539-x EDN: IZNKJL ▼ Контекст
94. Haines K, Parker V, Ohnuma T, Krishnamoorthy V, Raghunathan K, Sulo S, et al. Role of early enteral nutrition in mechanically ventilated COVID-19 patients. Crit Care Explor. 2022;4(4):e0683. 10.1097/ CCE.0000000000000683. DOI: 10.1097/CCE.0000000000000683 EDN: MZSDYI ▼ Контекст
95. Koekkoek WACK, van Setten CHC, Olthof LE, Kars JCNH, van Zanten ARH. Timing of PROTein INtake and clinical outcomes of adult critically ill patients on prolonged mechanical VENTilation: the PROTINVENT retrospective study. Clin Nutr. 2019;38(2):883-890. DOI: 10.1016/j.clnu.2018.02.012
96. Compher C, Bingham AL, McCall M, Patel J, Rice TW, Braunschweig C, et al. Guidelines for the provision of nutrition support therapy in the adult critically ill patient: the American Society for Parenteral and Enteral Nutrition. J Parenter Enteral Nutr. 2022;46(1):12-41. DOI: 10.1002/jpen.2267 97. Schuetz P, Fehr R, Baechli V, Geiser M, Deiss M, Gomes F, et al. Individualised nutritional support in medical inpatients at nutritional risk: a randomised clinical trial. Lancet. 2019;393(10188):2312-2321. DOI: 10.1016/S0140-6736(18)32776-4

Выпуск

№ 1 (2026)

Кол-во страниц: 138 страниц

Другие статьи выпуска

ПРЕДИКТОРЫ ДИСБИОЗА КИШЕЧНИКА У ПАЦИЕНТОВ С ФУНКЦИОНИРУЮЩЕЙ КОЛОСТОМОЙ ПОСЛЕ ПЕЛЬВИОАБДОМИНАЛЬНЫХ РАНЕНИЙ ПЕРЕД ВЫПОЛНЕНИЕМ РЕКОНСТРУКТИВНОВОССТАНОВИТЕЛЬНОГО ОПЕРАТИВНОГО ЛЕЧЕНИЯ (2026)

Авторы: Еселевич Р. В., Балюра О. В., Гирш А. О., Степанов С. С., Мельникова Е. В., Монгуш С. М., Левковский С. С., Суров Д. А.

Цель исследования — определение достоверных предикторов дисбиоза кишечника у пациентов с функционирующей колостомой после пельвиоабдоминальных ранений перед выполнением реконструктивно-восстановительного оперативного лечения для верификации направленной его коррекции.

Материалы и методы. Проведено проспективное когортное клиническое исследование с участием 35 пациентов (средний возраст — 38 (30; 44) лет) с функционирующей колостомой, поступивших в плановом порядке после стандартного предоперационного обследования в период с июля по ноябрь 2025 г. для реконструктивно-восстановительного оперативного лечения. Биологический материал (кишечное отделяемое из колостомы), собранный в стерильную емкость, доставлялся в бактериологическую лабораторию в течение двух часов после забора. Исследование образцов проводилось культуральным методом. Определяли следующие составляющие микробиома: бифидобактерии, лактобактерии, энтерококки, Klebsiella spp., Candida albicans и типичную E. coli (log₁₀ КОЕ/г). Осуществляли иерархический кластерный, регрессионный и корреляционный статистический анализ.

Результаты. Пациенты с дисбиозом III–IV степени характеризуются визуально определяемым снижением обилия комменсальных бифидобактерий и лактобактерий и одновременным повышением содержания условно-патогенных энтеробактерий и Candida albicans. У условно-патогенных энтеробактерий, включая Klebsiella spp., выявлена положительная линейная зависимость (R² = 0,49) и прогрессивно увеличивающаяся концентрация, достигающая максимальных значений (> 10⁷ КОЕ/г) при дисбиозе IV степени. У лактобактерий наблюдалась умеренная отрицательная тенденция (R² = 0,31), выражающаяся в сохранении концентрации 10⁶ КОЕ/г при I–II степени дисбиоза, а также в значительной вариативности значений и их снижением при дисбиозе III–IV степени. У Candida albicans регистрировалась позитивная зависимость (R² = 0,27) и существенное увеличение концентрации (> 10⁴ КОЕ/г) при дисбиозе III–IV степени. У типичной E. coli фиксировались слабая отрицательная тенденция (R² = 0,18) и высокая вариабельность концентраций со снижением ниже 10⁷ КОЕ/г при дисбиозе III–IV степени. У энтерококков не выявлялось четкой линейной зависимости (R² = 0,05), так как распределение носило нелинейный характер и согласовалось с результатами кластерного анализа, показавшего ассоциацию как высоких (> 10⁷), так и низких (< 10⁵) концентраций с разными степенями дисбиоза.

Полученная информация на основании осуществленных методов анализа свидетельствует о том, что наиболее значимыми предикторами (p < 0,01) являются содержание в кишечнике клебсиеллы (OR = 8,2) и бифидобактерий (β = –0,42). При этом начало клинически значимого дисбиоза кишечника начинает проявляться при содержании бифидобактерий < 10⁸ КОЕ/г и клебсиеллы > 10⁶ КОЕ/г. Выявлено, что протективными факторами эволюционирования дисбиоза является концентрация в микробиоме лактобактерий > 10⁶ КОЕ/г и типичной E. coli > 10⁷ КОЕ/г. Обнаружено и наличие комбинированных эффектов составляющих микробиоты в отношении развития дисбиоза кишечника, а именно: сочетание фактора содержания Klebsiella spp. > 10⁶ и бифидобактерий < 10⁷ в 92 % случаев обусловливает развитие дисбиоза III–IV степени выраженности, а содержание Candida albicans > 10⁴ синергетически усиливает негативный эффект Klebsiella spp. (p = 0,008), что предполагает утяжеление дисбактериоза. Нарастанию тяжести дисбиоза кишечника содействует увеличение содержания в микробиоме > 10⁴ КОЕ/г грибов рода Candida albicans и уменьшение < 10⁵ КОЕ/г энтрерококков.

Выводы. Достоверными предикторами дисбиоза кишечника у пациентов с функционирующей колостомой после пельвиоабдоминальных ранений перед выполнением реконструктивно-восстановительного оперативного лечения являются снижение содержания бифидобактерий, лактобактерий, энтерококков и типичной E. coli, а также увеличение концентрации Klebsiella spp. и Candida albicans.

Наибольшей прогностической силой в отношении выраженности дисбиоза кишечника обладают значения бифидобактерий и Klebsiella spp., что обосновывает их использование в качестве ключевых лабораторных маркеров.

У пациентов с дисбиозом III–IV степени тяжести визуализировано снижение содержания комменсальной флоры (бифидобактерий и лактобактерий) на фоне возрастания концентрации ее условно-патогенных представителей (Klebsiella spp. и Candida albicans).

У пациентов с функционирующей колостомой после пельвиоабдоминальных ранений перед выполнением реконструктивно-восстановительного оперативного лечения для улучшения исходов целесообразно осуществлять адресную коррекцию дисбиоза кишечника с помощью многокомпонентного метабиотика.

Сохранить в закладках

ОРГАНИЗАЦИЯ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ В НОВЫХ ПРИЕМНО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ОТДЕЛЕНИЯХ МЕЖРАЙОННЫХ БОЛЬНИЦ II УРОВНЯ (2026)

Авторы: Бенян А. С., Денчик А.В., Чернуха Р.С., БОБРОВ Е. А., Гаспарян Е.А.

Приемно-диагностическое отделение (ПДО) является мультифункциональным центром в системе оказания медицинской помощи, имеющим проблемы дисбаланса между высокими требованиями к качеству и доступности помощи и объективными ограничениями (переполненностью, нехваткой площадей). Решение этих задач — комплексный подход, сочетающий инфраструктурные, кадровые и инновационные организационно-технологические методы (цифровой трансформации и бережливого производства).

Цель исследования — провести оценку результатов деятельности вновь возведенных ПДО, учитывая существующую проблематику.

Материалы и методы. В рамках реализации федерального проекта «Модернизация первичного звена здравоохранения» на базе четырех центральных районных больниц второго уровня возведены новые ПДО, отвечающие современным требованиям оказания медицинской помощи. Определены и утверждены три группы качественных критериев: инфраструктурно-логистические, лечебно-диагностические, информационно-аналитические. Учитывая пандемию COVID-19 в 2020– 2022 гг., сравнительную оценку проводили между 2018–2019 и 2023– 2024 гг.

Результаты. Анализ данных проиллюстрирован в трех таблицах, получена статистическая значимость p < 0,001 (t-критерия Стьюдента для независимых выборок на основе представленных средних и стандартных отклонений при α = 0,05) при оценке инфраструктурно-логистических и лечебно-диагностических критериев эффективности работы ПДО (критерий χ2 для анализа долей при α = 0,05).

Заключение. Отмечен значительный скачок в системной трансформации процессов при внедрении цифровых технологий. Соблюдение принципов бережливого производства в ПДО укрепляет устойчивость многопрофильного учреждения к повышенным нагрузкам, одновременно повышаются качество и доступность медицинской помощи.

Сохранить в закладках

Статистика статьи

Статистика просмотров за 2026 год.

Издательство

Издательство: БФЦОЗШ
Регион: Россия, Ленинск-Кузнецкий
Почтовый адрес: 652509, Кемеровская область г. Ленинск-Кузнецкий, ул. Лесной городок, 52/2
Юр. адрес: 652509, Кемеровская область - Кузбасс, г. Ленинск-Кузнецкий, ул. Лесной городок, д. 52 к.2
ФИО: Лазурина Анастасия Владимировна (Редактор)
E-mail адрес: lazyrina-an@mail.ru
Контактный телефон: +7 (384) 5695534
Сайт: https://mine-med.ru

Статья: ДЛИТЕЛЬНОСТЬ ИСКУССТВЕННОЙ ВЕНТИЛЯЦИИ ЛЕГКИХ У БОЛЬНЫХ С ОСТРЫМ РЕСПИРАТОРНЫМ ДИСТРЕСССИНДРОМОМ ПРИ РАЗНОТИПНЫХ СТРАТЕГИЯХ ПИТАНИЯ (СООБЩЕНИЕ 2) (2026)