Статья: Фитосанитарные аспекты контроля Сonvolvulus arvensis L. (вьюнка полевого) в подкарантинной продукции (2025)

Настоящее исследование посвящено разработке определителя псевдопупариев белокрылок рода Aleurodicus (Hemiptera: H omoptera: A leyrodidae), играющих важную роль в фитосанитарии и подлежащих контролю со стороны стран – импортеров российской сельскохозяйственной продукции. В рамках данной работы рассмотрено четыре ключевых вида: Aleurodicus cocois Curtis, 1846; Aleurodicus destructor Mackie, 1912; Aleurodicus dispersus Russell, 1965 и Aleurodicus floccissimus (Martin, Hérnandez-Suarez & Carnero, 1997). Эти виды представляют значительную угрозу для растениеводческих отраслей в регионах импорта (Quaintance, 1908).

На основе оригинального материала, предоставленного лабораторией энтомологии Испытательного лабораторного центра Всероссийского центра карантина растений и лабораторией систематики насекомых Зоологического института Российской академии наук (ЗИН РАН), проведен детальный сравнительный анализ морфологических характеристик указанных видов на стадии псевдопупария (4-й личиночной стадии). Особое внимание было уделено созданию иллюстративного ключа, который значительно упрощает процесс идентификации вредителей специалистами карантинных служб.

Полученные результаты включают обновленную и детализированную информацию о внешних признаках и строении псевдопупариев изучаемых видов. В работе отражены оригинальные фотографии, наглядно демонстрирующие ключевые диагностические особенности каждого вида, представлена сравнительная таблица, делающая акцент на основные морфологические признаки псевдопупариев. Такой подход способствует повышению точности диагностики и минимизации рисков ошибочной идентификации вредоносных организмов.

Разработанный определитель является важным инструментом для обеспечения фитосанитарной безопасности и соблюдения международных фитосанитарных норм, обеспечивая эффективную защиту растительного мира от инвазивных видов.

Вирус полосатой мозаики пшеницы (Wheat streak mosaic v irus, или Tritimovirus tritici; акроним – WSMV) является вредоносным патогеном пшеницы, кукурузы, овса, проса, ржи, сорго, тритикале, ячменя и многочисленных видов многолетних злаковых трав. Потери урожая пшеницы в результате заражения этим вирусом могут достигать 100%. WSMV распространяется контактным способом, с семенами и пшеничным завитушным клещом Aceria tosichella Keifer. Положение об отсутствии этого вируса содержится в фитосанитарных требованиях 16 стран – импортеров российской зерновой продукции.

Для разработки методических рекомендаций по выявлению и идентификации WSMV было проведено испытание трех тест-систем для ИФА ведущих фирм-производителей, четырех тест-систем для ПЦР в «реальном времени» (ОТ-ПЦР-РВ) и восьми пар праймеров для классической ОТ-ПЦР. Установлен достаточно высокий уровень специфичности к целевому объекту у тест-систем для ИФА к WSMV фирм Agdia, DSMZ и Loewe. Совпадения результатов серологических тестов с тест-системой фирмы Agdia и результатов молекулярных тестов составило 90,5–100%, что позволяет рекомендовать данную тест-систему для проведения скрининговых тестов на наличие WSMV. Установлено, что наборы реагентов для ПЦР-РВ к WSMV отечественных фирм-производителей могут быть рекомендованы для проведения скрининговых тестов на наличие WSMV при проведении фитосанитарного мониторинга посевов и для анализа семян зерновых культур, предназначенных для использования внутри Российской Федерации. Для анализа зерновой продукции, предназначенной для экспорта, альтернативой методу ИФА может являться тест в формате одноэтапной ОТ-ПЦРРВ с праймерами и зондом W SMV F 1/WSMV R 1/ WSMV P. Для проведения подтверждающих тестов на наличие WSMV отработан протокол одноэтапной классической ОТ-ПЦР с праймерами PMB-70/ PMB-71, не уступающий по чувствительности тестам методом ПЦР в «реальном времени». Установлена возможность использования праймеров WSMV-F/WSMV-R и WSMVL2/WSMVR2 в качестве подтверждающих тестов. Для изучения генетических особенностей у выявляемых изолятов в качестве дополнительных тестов целесообразно использовать праймеры WSMV-CP-AM-F2/WSMVCPAM-R и WSMV-CP-Czech-F/WSMV-CP-Czech-R, которые амплифицируют полные последовательности нуклеотидов генов белка оболочки изолятов штаммов WSMV-D и WSMV-B соответственно.

В работе проведен анализ динамики производства сои в России, объемов экспорта и фитосанитарных требований основных стран – импортеров российской сои. В тройку стран, импортирующих российскую сою, входит Китайская Народная Республика, Республика Беларусь и Республика Казахстан. По результатам обследования посевов данной культуры на территории Алтайского края и Приморского края представлены экспериментальные данные о выявлении микобиоты, ассоциированной с растениями сои. Эти данные дополнены обобщенными литературными сведениями о фитопатогенах, получивших широкое распространение на территории страны, в частности на Дальнем Востоке – основном соесеющем регионе России.

В ходе фитосанитарного мониторинга было отобрано 82 образца растений сои, выделено 239 изолятов культивируемых микромицетов, определен видовой состав с помощью морфологических (макро- и микропризнаки) и генетических (определение нуклеотидных последовательностей участка ITS1-5,8S-ITS2) методов. Описана видовая структура патогенного микоценоза вегетирующих растений сои, которая представлена грибами родов Fusarium (43%,), Alternaria (23%), Diaporthe (6,5%), Colletotrichum (6,5%), Sclerotinia (4%) и др. Впервые на растениях сои на территории страны отмечены такие виды, как Сolletotrichum lineola и Colletotrichum incanum. Еще одной находкой, выявленной в ходе обследования Алтайского края, является возбудитель фомопсиса сои – Diaporthe cf. cucurbitae. В статье приведены иллюстрации симптомов болезней, макро- и микроскопические характеристики основных фитопатогенов. Показано, что грибные патогены сои, регулируемые странами-импортерами, широко распространены в посевах сои Российской Федерации, что может отрицательно сказываться на возможностях экспорта.

Представлены исследования по изучению дальности разлета короеда-типографа Ips typographus L., 1758 как возможного переносчика фитопатогенных организмов (бактерии, грибы, нематоды). Направления миграции короедов рода Ips имеет важное значение для оценки рисков, связанных с их распространением и влиянием на экосистему. Для мечения имаго короеда-типографа были использованы два способа – окраска порошком люминофора и маркировка насечкой на скате надкрылий. Сбор имаго в лесном ценозе и повторный отлов меченых короедов проводили с применением феромонных ловушек барьерно-вороночного типа, внутри которых размещали видоспецифичный аттрактант для приманивания короеда-типографа. Эксперимент проводили в Республике Карелии в открытых биоценозах в период активного лёта насекомых. Как меченные порошком люминофора, так и насечкой имаго были зарегистрированы в ловушках при повторном отлове. При изучении дальности разлета короедов феромонные ловушки были размещены в юго-западном направлении до 6 шт с интервалом 2 км на протяжении 12 км. Всего в результате двухлетнего эксперимента из 2132 меченых особей короеда-типографа (насечкой 1350, порошком люминофора 782) повторно отловлено 137 жуков (7%). Наибольшее количество жуков, как окрашенных порошком, так и меченных насечкой, отлавливалось на расстоянии 1–2 км в юго-западном направлении, а максимальная дальность разлета зафиксирована в ловушке, установленной в этом направлении на 6 км. Жуки-короеды в значительной степени ориентированы на разлет в юго-западном направлении, что обусловлено преобладанием розы ветров в местности, где проводились исследования. Порошок люминофора и насечка на скате надкрылий жуков являются допустимым способом маркировки короедов для их идентификации.